摘要 | 第5-8页 |
ABSTRACT | 第8-10页 |
第1章 绪论 | 第14-26页 |
1.1 引言 | 第14-15页 |
1.2 乌桕应用价值及生物学特性 | 第15-20页 |
1.2.1 应用价值 | 第15-18页 |
1.2.2 生物学特性 | 第18-20页 |
1.3 植物花发育的研究进展 | 第20-24页 |
1.3.1 高等植物的成花过程 | 第20-21页 |
1.3.2 花发育相关基因的研究进展 | 第21-23页 |
1.3.3 环境因子对花发育的调控 | 第23-24页 |
1.4 主要研究内容及技术路线 | 第24-26页 |
第2章 乌桕花发育形态学研究及其转录组测序分析 | 第26-46页 |
2.1 引言 | 第26页 |
2.2 实验材料与方法 | 第26-29页 |
2.2.1 材料 | 第26-27页 |
2.2.2 试剂 | 第27页 |
2.2.3 主要仪器设备 | 第27页 |
2.2.4 乌桕花芽石蜡制片方法 | 第27-28页 |
2.2.5 总RNA的提取及纯化 | 第28页 |
2.2.6 乌桕花芽转录组Illumina高通量测序及分析 | 第28-29页 |
2.3 结果 | 第29-46页 |
2.3.1 乌桕花芽分化的显微结构观察 | 第30-32页 |
2.3.2 乌桕花发育过程的形态学观察 | 第32-33页 |
2.3.3 RNA提取 | 第33-34页 |
2.3.4 原始测序数据统计 | 第34-35页 |
2.3.5 Unigenes功能注释 | 第35-36页 |
2.3.6 GO和KEGG富集分析 | 第36-37页 |
2.3.7 MADS box基因鉴定及系统发育树构建 | 第37-39页 |
2.3.8 乌桕花发育调控通路的预测 | 第39-42页 |
2.3.9 乌桕脂肪酸合成代谢通路的预测 | 第42-43页 |
2.3.10 乌桕环境胁迫基因调控网络的预测 | 第43-46页 |
第3章 乌桕花发育关键基因研究 | 第46-84页 |
3.1 引言 | 第46页 |
3.2 实验材料与方法 | 第46-53页 |
3.2.1 植物材料 | 第46页 |
3.2.2 主要试剂 | 第46-47页 |
3.2.3 实验方法 | 第47-53页 |
3.3 结果 | 第53-82页 |
3.3.1 乌桕SsLFY基因的克隆及功能分析 | 第53-63页 |
3.3.2 乌桕SsTFL1基因的克隆及功能分析 | 第63-67页 |
3.3.3 乌桕SsAP1基因的克隆及序列分析 | 第67-71页 |
3.3.4 乌桕SsAP2基因的克隆及序列分析 | 第71-75页 |
3.3.5 乌桕SsCO基因的克隆及序列分析 | 第75-79页 |
3.3.6 乌桕SsFUL基因的克隆及序列分析 | 第79-82页 |
3.4 小结 | 第82-84页 |
第4章 乌桕VIGS功能基因鉴定体系的建立 | 第84-98页 |
4.1 引言 | 第84页 |
4.2 实验材料与方法 | 第84-88页 |
4.2.1 实验材料 | 第84-85页 |
4.2.2 质粒与菌种 | 第85页 |
4.2.3 实验仪器 | 第85页 |
4.2.4 试剂 | 第85页 |
4.2.5 实验方法 | 第85-88页 |
4.3 结果 | 第88-95页 |
4.3.1 乌桕PDS和AS1同源基因的克隆 | 第88页 |
4.3.2 乌桕PDS和AS1同源基因的克隆 | 第88-89页 |
4.3.3 VIGS病毒载体的构建 | 第89-90页 |
4.3.4 乌桕PDS基因VIGS实验体系的建立 | 第90-94页 |
4.3.5 乌桕AS1基因验证VIGS体系 | 第94-95页 |
4.4 小结 | 第95-98页 |
第5章 干旱胁迫诱导乌桕早花研究 | 第98-114页 |
5.1 引言 | 第98-99页 |
5.2 实验材料与方法 | 第99-103页 |
5.2.1 试剂 | 第99页 |
5.2.2 实验仪器 | 第99页 |
5.2.3 溶液配制 | 第99页 |
5.2.4 实验方法 | 第99-103页 |
5.3 结果 | 第103-110页 |
5.3.1 干旱胁迫诱导的早花乌桕 | 第103-104页 |
5.3.2 胁迫诱导的早花乌桕转录水平分析 | 第104-106页 |
5.3.3 胁迫诱导的早花乌桕蛋白水平分析 | 第106-110页 |
5.4 讨论 | 第110-114页 |
结论 | 第114-116页 |
参考文献 | 第116-126页 |
附录 | 第126-148页 |
致谢 | 第148-150页 |
在读期间发表的学术论文与取得的其他研究成果 | 第150-151页 |