| 中文摘要 | 第8-12页 |
| ABSTRACT | 第12-16页 |
| 符号说明 | 第17-20页 |
| 前言 | 第20-30页 |
| 1. 炎症与动脉粥样硬化 | 第21-23页 |
| 2. 自噬与动脉粥样硬化炎症 | 第23-26页 |
| 3. 动脉粥样硬化药物治疗 | 第26-28页 |
| 4. 化合物桑色素 | 第28-30页 |
| 材料与方法 | 第30-51页 |
| 1. 实验材料 | 第30-38页 |
| 1.1 化合物及试剂 | 第30页 |
| 1.2 细胞株及其培养 | 第30-31页 |
| 1.3 实验动物 | 第31页 |
| 1.4 实验试剂 | 第31-34页 |
| 1.5 仪器设备 | 第34-35页 |
| 1.6 试剂配制 | 第35-38页 |
| 2. 实验方法 | 第38-51页 |
| 2.1 HUVECs细胞提取、培养与鉴定 | 第38-39页 |
| 2.2 HUVECs细胞生长抑制试验 | 第39-40页 |
| 2.3 ELISA检测HUVECs细胞sICAM-1的释放和cAMP的含量试验 | 第40-42页 |
| 2.4 Western blotting法检测HUVECs细胞相关蛋白试验 | 第42-47页 |
| 2.5 基因干扰试验 | 第47-48页 |
| 2.6 溶酶体绿色荧光探针试验 | 第48-49页 |
| 2.7 动脉粥样硬化动物模型的建立与斑块及血脂水平检测试验 | 第49-50页 |
| 2.8 统计学方法 | 第50-51页 |
| 实验结果 | 第51-67页 |
| 1. HUVECs细胞鉴定 | 第51-52页 |
| 2. MO对TNF-α诱导HUVECs细胞炎性损伤的影响 | 第52-57页 |
| 2.1 TNF-α对HUVECs细胞增殖活力的影响 | 第52页 |
| 2.2 TNF-α对HUVECs细胞形态学的影响 | 第52-53页 |
| 2.3 TNF-α促进HUVECs细胞炎症因子ICAM-1、COX-2和MMP-9的蛋白表达 | 第53-54页 |
| 2.4 TNF-α促进HUVECs细胞炎症因子sICAM-1的释放 | 第54页 |
| 2.5 MO对HUVECs细胞增殖活力的影响 | 第54-55页 |
| 2.6 MO抑制TNF-α诱导的HUVECs细胞炎症因子ICAM-1、COX-2和MMP-9的蛋白表达 | 第55-56页 |
| 2.7 MO抑制TNF-α诱导的内皮细胞炎症因子sICAM-1的释放 | 第56-57页 |
| 3. MO对HUVECs细胞自噬的影响 | 第57-61页 |
| 3.1 MO诱导HUVECs细胞自噬 | 第57-59页 |
| 3.2 MO抑制内皮细胞炎症因子ICAM-1、COX-2和MMP-9的蛋白表达依赖于自噬诱导作用 | 第59-61页 |
| 4. cAMP-KA/AMPK/SIRT1通路在MO诱导HUVECs细胞自噬及其抑制TNF-α诱导的炎症损伤中的作用 | 第61-65页 |
| 4.1 MO对HUVECs细胞内cAMP含量的影响 | 第61-62页 |
| 4.2 MO促进内皮细胞PKA、AMPK、p-AMPK和SIRT1的蛋白表达 | 第62-63页 |
| 4.3 MO通过SIRT1依赖性地诱导内皮细胞自噬及发挥抗炎作用 | 第63-65页 |
| 5. MO对动脉粥样硬化小鼠动脉斑块及血脂水平的影响 | 第65-67页 |
| 讨论 | 第67-72页 |
| 结论 | 第72-73页 |
| 参考文献 | 第73-81页 |
| 致谢 | 第81-82页 |
| 攻读硕士学位期间发表论文 | 第82-83页 |
| 学位论文评阅及答辩情况表 | 第83页 |
