| 摘要 | 第4-6页 |
| Abstract | 第6-7页 |
| 缩略词表 | 第8-12页 |
| 1. 前言 | 第12-20页 |
| 1.1 SERK基因概述及研究现状 | 第12-14页 |
| 1.1.1 SERK基因及SERK基因家庭 | 第12-13页 |
| 1.1.2 SERK基因与体细胞胚发生 | 第13-14页 |
| 1.2 植物体细胞胚发生的研究进展 | 第14-16页 |
| 1.2.1 植物体细胞胚发生的特点与意义 | 第14-15页 |
| 1.2.2 植物体细胞胚发生的细胞学观察 | 第15-16页 |
| 1.3 凤梨科植物遗传转化的研究进展 | 第16-18页 |
| 1.3.1 凤梨科植物遗传转化体系的建立 | 第16-17页 |
| 1.3.2 凤梨科植物转基因植株筛选方法的改良 | 第17-18页 |
| 1.4 凤梨科植物的经济价值及生物学特性 | 第18页 |
| 1.5 本研究的目的及意义 | 第18-20页 |
| 2. 红苞凤梨胚性悬浮系的建立 | 第20-32页 |
| 2.1 材料与方法 | 第20-22页 |
| 2.1.1 材料 | 第20页 |
| 2.1.2 方法 | 第20-22页 |
| 2.2 结果与分析 | 第22-31页 |
| 2.2.1 2,4-D对愈伤组织增殖的影响 | 第22-24页 |
| 2.2.2 初代悬浮培养愈伤组织的生长过程 | 第24-25页 |
| 2.2.3 愈伤组织悬浮培养系的建立 | 第25-26页 |
| 2.2.4 愈伤组织悬浮系的胚性诱导 | 第26-27页 |
| 2.2.5 胚性细胞悬浮系的建立 | 第27-28页 |
| 2.2.6 2,4-D与BA浓度组合对胚性悬浮细胞增殖的影响 | 第28-29页 |
| 2.2.7 不同培养方式对单细胞培养的影响 | 第29-30页 |
| 2.2.8 胚性悬浮细胞团的形成过程 | 第30-31页 |
| 2.3 小结 | 第31-32页 |
| 3. PFGC5941-AcSERK2-bar正义植物表达载体转化红苞凤梨 | 第32-43页 |
| 3.1 材料与方法 | 第32-37页 |
| 3.1.1 材料 | 第32-34页 |
| 3.1.2 方法 | 第34-37页 |
| 3.2 结果与分析 | 第37-42页 |
| 3.2.1 抗生素Carb对愈伤组织生长的影响 | 第37-38页 |
| 3.2.2 农杆菌介导的AcSERK2对红苞凤梨的遗传转化 | 第38-40页 |
| 3.2.3 PPT抗性植株的分子检测 | 第40-42页 |
| 3.3 小结 | 第42-43页 |
| 4. pYLRNAi-AcSERK2-hpt干扰载体转化红苞凤梨 | 第43-53页 |
| 4.1 材料与方法 | 第43-46页 |
| 4.1.1 材料 | 第43-44页 |
| 4.1.2 方法 | 第44-46页 |
| 4.2 结果与分析 | 第46-52页 |
| 4.2.1 农杆菌介导的AcSERK2对红苞凤梨的遗传转化 | 第46-50页 |
| 4.2.2 HygB抗性植株的分子检测 | 第50-52页 |
| 4.3 小结 | 第52-53页 |
| 5. 转基因植株AcSERK2表达的荧光定量分析 | 第53-58页 |
| 5.1 材料与方法 | 第53-55页 |
| 5.1.1 材料 | 第53页 |
| 5.1.2 方法 | 第53-55页 |
| 5.2 结果与分析 | 第55-57页 |
| 5.3 小结 | 第57-58页 |
| 6. 讨论 | 第58-61页 |
| 6.1 悬浮培养系的建立 | 第58页 |
| 6.2 培养方式对单细胞培养的影响 | 第58-59页 |
| 6.3 PPT的筛选作用 | 第59页 |
| 6.4 HygB的筛选作用 | 第59页 |
| 6.5 hpt和bar作为红苞凤梨转基因筛选标记基因的比较 | 第59-61页 |
| 7. 结论 | 第61-63页 |
| 参考文献 | 第63-69页 |
| 致谢 | 第69页 |
