| 摘要 | 第4-6页 |
| ABSTRACT | 第6-7页 |
| 第一章 文献综述 | 第14-26页 |
| 1.1 siRNA治疗药物简介 | 第14-17页 |
| 1.1.1 siRNA的作用机制 | 第14-15页 |
| 1.1.2 基因药物分子(siRNA)的研究概况 | 第15-16页 |
| 1.1.3 RNA干扰的突出特征 | 第16页 |
| 1.1.4 siRNA介导治疗的优点 | 第16-17页 |
| 1.1.5 siRNA药物应用中存在的问题 | 第17页 |
| 1.2 化学药物治疗 | 第17-19页 |
| 1.2.1 阿霉素的理化性质 | 第18-19页 |
| 1.3 细胞穿膜肽的研究与应用 | 第19页 |
| 1.4 智能高分子纳微载体的研究进展 | 第19-24页 |
| 1.4.1 纳米球 | 第20-22页 |
| 1.4.2 纳米管 | 第22页 |
| 1.4.3 胶束 | 第22-23页 |
| 1.4.4 自组装原理 | 第23-24页 |
| 1.5 本课题的研究意义及内容 | 第24-26页 |
| 1.5.1 本课题的研究意义 | 第24页 |
| 1.5.2 本课题的研究内容 | 第24-26页 |
| 第二章 载siRNA及Dox药物的纳米管的制备和表征 | 第26-34页 |
| 2.1 引言 | 第26-27页 |
| 2.2 实验方法 | 第27-30页 |
| 2.2.1 实验材料与药品 | 第27-28页 |
| 2.2.2 实验仪器 | 第28页 |
| 2.2.3 多肽自组装纳米管的制备 | 第28-29页 |
| 2.2.4 纳米管表面靶向穿膜肽tLyp-1的嫁接 | 第29页 |
| 2.2.5 自组装纳米短管装载阿霉素 | 第29页 |
| 2.2.6 Dox药物载药量的测定 | 第29-30页 |
| 2.2.7 纳米管电势和粒径分布的测定 | 第30页 |
| 2.2.8 纳米管对siRNA药物的复合能力 | 第30页 |
| 2.2.9 纳米管的稳定性研究 | 第30页 |
| 2.3 结果与讨论 | 第30-33页 |
| 2.3.1 纳米管及修饰载药后的纳米管透射电镜表征 | 第30-31页 |
| 2.3.2 纳米管电势和粒径分布及载药量的测定 | 第31-32页 |
| 2.3.3 纳米管对siRNA药物的复合能力 | 第32页 |
| 2.3.4 纳米管的稳定性研究 | 第32-33页 |
| 2.4 本章小结 | 第33-34页 |
| 第三章 载siRNA及Dox药物的纳米管响应性和抗肿瘤效果研究 | 第34-46页 |
| 3.1 引言 | 第34-35页 |
| 3.2 实验方法 | 第35-39页 |
| 3.2.1 实验材料与药品 | 第35-36页 |
| 3.2.2 实验仪器 | 第36页 |
| 3.2.3 SNT/siRNA的GSH响应性研究 | 第36-37页 |
| 3.2.4 二硫键交联的SNT/Dox的体外释放实验 | 第37页 |
| 3.2.5 SNT和SNT/tLyp-1的细胞内吞研究 | 第37-38页 |
| 3.2.6 体外细胞杀伤实验 | 第38页 |
| 3.2.7 体外靶基因沉默效果 | 第38-39页 |
| 3.3 结果与讨论 | 第39-45页 |
| 3.3.1 TEM及凝胶电泳考察SNT/siRNA的GSH响应性研究 | 第39-40页 |
| 3.3.2 二硫键交联的SNT/Dox的体外释放实验 | 第40页 |
| 3.3.3 流式细胞仪测定SNT和SNT/tLyp-1的细胞内吞实验 | 第40-41页 |
| 3.3.4 CLSM观察SNT和SNT/tLyp-1的细胞内吞实验 | 第41-42页 |
| 3.3.5 细胞毒性实验 | 第42-43页 |
| 3.3.6 Live-dead实验 | 第43-44页 |
| 3.3.7 细胞水平靶基因沉默效果 | 第44-45页 |
| 3.4 本章小结 | 第45-46页 |
| 第四章 结论与展望 | 第46-48页 |
| 4.1 结论 | 第46页 |
| 4.2 创新点 | 第46-47页 |
| 4.3 展望 | 第47-48页 |
| 参考文献 | 第48-56页 |
| 致谢 | 第56-58页 |
| 研究成果及发表的学术论文 | 第58-60页 |
| 作者及导师简介 | 第60-61页 |
| 附件 | 第61-62页 |
