| 中文摘要 | 第8-10页 |
| Abstract | 第10-12页 |
| 缩略词表 | 第13-14页 |
| 第一章 文献综述 | 第14-40页 |
| 1.1 前言 | 第14-16页 |
| 1.2 国内外研究进展 | 第16-37页 |
| 1.2.1 小麦胚乳淀粉质体形成和发育 | 第16-19页 |
| 1.2.2 小麦胚乳淀粉粒组成和结构 | 第19-23页 |
| 1.2.3 小麦胚乳淀粉粒表面微孔和微通道结构研究 | 第23-25页 |
| 1.2.4 小麦胚乳淀粉生物合成对淀粉粒表面微孔和微通道形成影响 | 第25-30页 |
| 1.2.5 干旱等非生物逆境胁迫对小麦淀粉形成发育影响 | 第30-37页 |
| 1.3 研究内容及目的意义 | 第37-40页 |
| 1.3.1 研究内容 | 第37-38页 |
| 1.3.2 研究目的意义 | 第38-40页 |
| 第二章 小麦花后干旱胁迫下胚乳淀粉粒微观特性变化研究 | 第40-63页 |
| 2.1 前言 | 第40-41页 |
| 2.2 材料与方法 | 第41-44页 |
| 2.2.1 试验材料 | 第41页 |
| 2.2.2 试验设计和干旱胁迫处理 | 第41-42页 |
| 2.2.3 淀粉粒提取和纯化 | 第42页 |
| 2.2.4 淀粉粒径分布测定 | 第42页 |
| 2.2.5 淀粉粒表面微孔结构的扫描电镜分析 | 第42页 |
| 2.2.6 淀粉粒酶解及还原糖测定 | 第42-43页 |
| 2.2.7 淀粉粒蛋白酶XIV和蛋白酶K酶解 | 第43页 |
| 2.2.8 淀粉粒汞溴红和CBQCA染色 | 第43页 |
| 2.2.9 淀粉粒表面微孔和微通道结构的激光共聚焦显微镜分析 | 第43页 |
| 2.2.10 数据统计分析 | 第43-44页 |
| 2.3 结果与分析 | 第44-59页 |
| 2.3.1 小麦不同发育时期胚乳淀粉粒形态 | 第44-48页 |
| 2.3.2 小麦不同发育时期胚乳淀粉粒微观结构变化 | 第48-49页 |
| 2.3.3 成熟期小麦胚乳外缘淀粉粒微观结构变化 | 第49-50页 |
| 2.3.4 小麦不同发育时期淀粉粒径分布 | 第50-52页 |
| 2.3.5 小麦胚乳淀粉粒酶解后形态变化 | 第52-54页 |
| 2.3.6 小麦胚乳淀粉粒酶解效率 | 第54-55页 |
| 2.3.7 小麦胚乳淀粉粒蛋白酶XIV酶解及化学染色 | 第55-57页 |
| 2.3.8 小麦胚乳淀粉粒蛋白酶K酶解及化学染色 | 第57-59页 |
| 2.4 讨论 | 第59-63页 |
| 2.4.1 小麦花后干旱胁迫对胚乳淀粉粒发育及粒径影响 | 第59-60页 |
| 2.4.2 小麦花后干旱胁迫下淀粉粒微观结构变化 | 第60-61页 |
| 2.4.3 本章研究的启示 | 第61-63页 |
| 第三章 小麦花后干旱胁迫对胚乳淀粉粒晶体结构及淀粉品质影响研究 | 第63-81页 |
| 3.1 前言 | 第63页 |
| 3.2 材料与方法 | 第63-65页 |
| 3.2.1 试验材料 | 第63页 |
| 3.2.2 试验设计和干旱胁迫处理 | 第63-64页 |
| 3.2.3 淀粉组分积累量及积累速率 | 第64页 |
| 3.2.4 淀粉晶体结构测定 | 第64页 |
| 3.2.5 支链淀粉糖链长分布测定 | 第64页 |
| 3.2.6 淀粉糊化特性测定 | 第64页 |
| 3.2.7 淀粉持水力测定 | 第64-65页 |
| 3.2.8 淀粉膨胀势测定 | 第65页 |
| 3.2.9 破损淀粉测定 | 第65页 |
| 3.2.10 数据统计分析 | 第65页 |
| 3.3 结果与分析 | 第65-78页 |
| 3.3.1 小麦籽粒形态和大小 | 第65-68页 |
| 3.3.2 小麦淀粉组分积累量 | 第68-71页 |
| 3.3.3 小麦淀粉粒晶体结构类型 | 第71-72页 |
| 3.3.4 小麦淀粉粒结晶特性 | 第72-73页 |
| 3.3.5 小麦支链淀粉糖链长分布 | 第73-74页 |
| 3.3.6 小麦支链淀粉糖各链段相对峰面积分布 | 第74-75页 |
| 3.3.7 小麦籽粒淀粉持水力和膨润力 | 第75-76页 |
| 3.3.8 小麦籽粒淀粉糊化特性 | 第76-77页 |
| 3.3.9 小麦籽粒破损淀粉 | 第77-78页 |
| 3.4 讨论 | 第78-81页 |
| 3.4.1 小麦花后干旱胁迫对籽粒淀粉组分和积累速率影响 | 第78-79页 |
| 3.4.2 小麦花后干旱胁迫对淀粉晶体结构影响 | 第79页 |
| 3.4.3 小麦花后干旱胁迫对淀粉品质影响 | 第79-80页 |
| 3.4.4 本章研究的启示 | 第80-81页 |
| 第四章 小麦花后干旱胁迫下籽粒灌浆中后期转绿组研究 | 第81-97页 |
| 4.1 前言 | 第81-82页 |
| 4.2 材料与方法 | 第82-84页 |
| 4.2.1 试验材料 | 第82页 |
| 4.2.2 试验设计和干旱胁迫处理 | 第82页 |
| 4.2.3 小麦胚乳RNA-Seq测序 | 第82页 |
| 4.2.4 小麦胚乳cDNA文库的构建和测序 | 第82页 |
| 4.2.5 转录组测序质量评估 | 第82-83页 |
| 4.2.6 转录组基因功能注释及表达量分析 | 第83页 |
| 4.2.7 基因差异表达分析 | 第83页 |
| 4.2.8 基因差异表达路径分析 | 第83-84页 |
| 4.3 结果与分析 | 第84-95页 |
| 4.3.1 小麦胚乳RNA质量及浓度检测 | 第84-86页 |
| 4.3.2 小麦胚乳RNA-Seq质量分析 | 第86-89页 |
| 4.3.3 小麦胚乳差异基因表达分析 | 第89-92页 |
| 4.3.4 小麦胚乳差异表达基因路径功能分析 | 第92-95页 |
| 4.4 讨论 | 第95-97页 |
| 4.4.1 小麦不同基因型响应干旱胁迫的转录本差异 | 第95页 |
| 4.4.2 小麦花后干旱影响淀粉和糖代谢路径 | 第95-96页 |
| 4.4.3 本章研究的启示 | 第96-97页 |
| 第五章 小麦花后干旱胁迫下淀粉合成酶与分解酶基因表达时空定位研究 | 第97-142页 |
| 5.1 前言 | 第97页 |
| 5.2 材料与方法 | 第97-107页 |
| 5.2.1 试验材料 | 第97页 |
| 5.2.2 试验设计和干旱胁迫处理 | 第97页 |
| 5.2.3 淀粉合成酶活性测定 | 第97-99页 |
| 5.2.4 淀粉分解酶活性测定 | 第99-100页 |
| 5.2.5 小麦胚乳总RNA提取 | 第100页 |
| 5.2.6 小麦胚乳总RNA质量检测 | 第100页 |
| 5.2.7 逆转录合成cDNA第一条链及质量检测 | 第100-101页 |
| 5.2.8 Real-time PCR引物设计 | 第101-103页 |
| 5.2.9 Real-time PCR反应体系 | 第103页 |
| 5.2.10 制备用于绘制标准曲线的梯度稀释cDNA模板 | 第103页 |
| 5.2.11 相对定量分析方法 | 第103页 |
| 5.2.12 不同时期籽粒组织石蜡切片制作 | 第103-104页 |
| 5.2.13 显色原位杂交探针制备 | 第104-106页 |
| 5.2.14 不同时期籽粒显色原位杂交 | 第106-107页 |
| 5.2.15 数据统计分析 | 第107页 |
| 5.3 结果与分析 | 第107-140页 |
| 5.3.1 标准曲线建立 | 第107-108页 |
| 5.3.2 待测基因内参校正 | 第108页 |
| 5.3.3 小麦淀粉合成限速酶基因的转录与酶活性 | 第108-110页 |
| 5.3.3.1 agpI、agpII基因的转录 | 第108-109页 |
| 5.3.3.2 AGPase活性 | 第109-110页 |
| 5.3.4 小麦淀粉合成酶基因的转录与酶活性 | 第110-113页 |
| 5.3.4.1 ssI、ssII、ssIII基因的转录 | 第110-113页 |
| 5.3.4.2 SS活性 | 第113页 |
| 5.3.5 小麦颗粒结合型淀粉合成酶基因的转录与酶活性 | 第113-115页 |
| 5.3.5.1 gbssI基因的转录 | 第113-114页 |
| 5.3.5.2 GBSS活性 | 第114-115页 |
| 5.3.6 小麦淀粉分支酶基因的转录与酶活性 | 第115-119页 |
| 5.3.6.1 sbeI、sbeIIa、sbeIIb基因的转录 | 第115-118页 |
| 5.3.6.2 SBE活性 | 第118-119页 |
| 5.3.7 小麦淀粉分去分支酶基因的转录与酶活性 | 第119-121页 |
| 5.3.7.1 isoI基因的转录 | 第119-120页 |
| 5.3.7.2 DBE活性 | 第120-121页 |
| 5.3.8 小麦 α 型淀粉分解酶基因的转录与酶活性 | 第121-125页 |
| 5.3.8.1 amyI、amyII、amyIII、amyIV基因的转录 | 第121-124页 |
| 5.3.8.2 α-Amylase活性 | 第124-125页 |
| 5.3.9 小麦 β 型淀粉分解酶基因的转录与酶活性 | 第125-128页 |
| 5.3.9.1 bamI基因的转录 | 第125-126页 |
| 5.3.9.2 bamV基因的转录 | 第126-127页 |
| 5.3.9.3 β-Amylase活性 | 第127-128页 |
| 5.3.10 amyIV基因表达时空定位 | 第128-132页 |
| 5.3.11 bamI基因表达时空定位 | 第132-136页 |
| 5.3.12 bamV基因表达时空定位 | 第136-140页 |
| 5.4 讨论 | 第140-142页 |
| 5.4.1 小麦淀粉合成酶与分解酶基因表达对淀粉合成的影响 | 第140页 |
| 5.4.2 小麦淀粉合成酶与分解酶对淀粉粒表面微观结构的影响 | 第140页 |
| 5.4.3 小麦淀粉合成酶与淀粉分解酶互作对籽粒淀粉形成发育过程的影响 | 第140-141页 |
| 5.4.4 本章研究的启示 | 第141-142页 |
| 第六章 结论与展望 | 第142-148页 |
| 6.1 前言 | 第142页 |
| 6.2 结论与创新点 | 第142-145页 |
| 6.2.1 主要结论 | 第142-144页 |
| 6.2.2 主要创新点 | 第144-145页 |
| 6.3 展望与继续深入研究设想 | 第145-148页 |
| 6.3.1 展望 | 第145-146页 |
| 6.3.2 继续深入研究设想 | 第146-148页 |
| 参考文献 | 第148-169页 |
| 致谢 | 第169-170页 |
| 个人简介 | 第170-171页 |
