| 摘要 | 第5-6页 |
| Abstract | 第6页 |
| 目录 | 第7-9页 |
| 第1章 文献综述 | 第9-21页 |
| 1.1 分子识别 | 第9-14页 |
| 1.1.1 分子识别的发展历程 | 第9页 |
| 1.1.2 荧光分子探针的ICT(分子内电荷转移)识别原理 | 第9-10页 |
| 1.1.3 荧光分子探针的PET(光诱导电子转移)识别原理 | 第10页 |
| 1.1.4 激发单体-激基缔合物(Monomer-Excimer) | 第10页 |
| 1.1.5 荧光共振能量转移(FRET) | 第10页 |
| 1.1.6 阴离子识别研究现状 | 第10-12页 |
| 1.1.7 阳离子识别研究现状 | 第12-14页 |
| 1.2 1,8-萘酰亚胺类衍生物的研究进展 | 第14-16页 |
| 1.3 ATP催化水解酶的模拟 | 第16-19页 |
| 1.3.1 超分子识别的几种典型相互作用力 | 第16-17页 |
| 1.3.2 ATP催化水解酶的研究进展 | 第17页 |
| 1.3.3 大环多胺类衍生物催化ATP水解 | 第17-18页 |
| 1.3.4 金属离子对ATP的水解的影响 | 第18-19页 |
| 1.4 本论文的选题依据以及研究目标 | 第19-21页 |
| 第2章 材料和方法 | 第21-24页 |
| 2.1 原料和仪器 | 第21-22页 |
| 2.1.1 主要原料 | 第21页 |
| 2.1.2 主要试剂 | 第21-22页 |
| 2.1.3 主要仪器 | 第22页 |
| 2.2 实验方法 | 第22-24页 |
| 2.2.1 衍生物的表征手段 | 第22页 |
| 2.2.2 离子识别的检测手段 | 第22页 |
| 2.2.3 衍生物催化ATP水解的检测手段 | 第22-24页 |
| 第3章 氨乙基-N-1,8-萘二甲酰亚胺的合成及其阴阳离子识别 | 第24-31页 |
| 3.1 实验步骤 | 第24-25页 |
| 3.1.1 氨乙基-N-1,8-萘二甲酰亚胺(L_1)的合成路线 | 第24页 |
| 3.1.2 配体L_1与阴阳离子的识别过程 | 第24-25页 |
| 3.2 结果与讨论 | 第25-30页 |
| 3.2.1 L_1的表征 | 第25-26页 |
| 3.2.2 配体L_1与不同阳离子的识别研究 | 第26-28页 |
| 3.2.3 配体L_1与不同阴离子的识别研究 | 第28-30页 |
| 3.3 结论 | 第30-31页 |
| 第4章 L_1催化ATP水解 | 第31-36页 |
| 4.1 ATP对L_1荧光强度的影响 | 第31-33页 |
| 4.2 温度对L_1催化ATP水解的影响 | 第33-34页 |
| 4.3 pH值对L_1催化ATP水解的影响 | 第34-35页 |
| 4.4 结论 | 第35-36页 |
| 第5章 1,8-萘二甲酸-L-组氨酸(L_2)的合成及其阳离子识别 | 第36-41页 |
| 5.1 实验步骤 | 第36-37页 |
| 5.1.1 L_2的合成路线及具体步骤 | 第36-37页 |
| 5.1.2 配体L_2与阳离子的识别步骤 | 第37页 |
| 5.2 结果与讨论 | 第37-39页 |
| 5.2.1 L_2的表征(FT-IR、~1H NMR、~(13)C NMR) | 第37-38页 |
| 5.2.2 配体L_2与不同阳离子的识别研究 | 第38-39页 |
| 5.3 结论 | 第39-41页 |
| 第6章 L_2催化ATP水解 | 第41-48页 |
| 6.1 ATP对L_2荧光强度的影响 | 第41-43页 |
| 6.2 L_2催化ATP水解的过程 | 第43-47页 |
| 6.2.1 温度对L_2催化ATP水解的影响 | 第44-45页 |
| 6.2.2 pH值对L_2催化ATP水解的影响 | 第45-46页 |
| 6.2.3 ATP单独水解速率常数(K'_(obs))及L_2催化ATP水解的速率常数(K_(obs))比较 | 第46-47页 |
| 6.3 结论 | 第47-48页 |
| 第7章 结论与展望 | 第48-49页 |
| 7.1 结论 | 第48页 |
| 7.2 展望 | 第48-49页 |
| 参考文献 | 第49-56页 |
| 致谢 | 第56-57页 |
| 作者简介及在学成果 | 第57-58页 |
| 导师评阅表 | 第58页 |
