摘要 | 第3-6页 |
Abstract | 第6-9页 |
缩略语表 | 第10-14页 |
第1章 绪论 | 第14-25页 |
1.1 黑色素综述 | 第14-19页 |
1.1.1 黑色素简介 | 第14页 |
1.1.2 黑色素的生物合成 | 第14-16页 |
1.1.3 黑色素的降解及结构研究 | 第16-19页 |
1.2 乌骨鸡黑色素概述 | 第19-22页 |
1.2.1 乌骨鸡黑色素形成相关机理研究 | 第19-21页 |
1.2.2 乌骨鸡黑色素的提取、降解及结构研究进展 | 第21-22页 |
1.3 本文主要研究内容、创新点和科学意义 | 第22-25页 |
1.3.1 主要研究内容 | 第22-23页 |
1.3.2 创新点 | 第23页 |
1.3.3 研究目的及意义 | 第23-25页 |
第2章 乌骨鸡黑色素的提取 | 第25-39页 |
2.1 引言 | 第25-26页 |
2.2 实验部分 | 第26-30页 |
2.2.1 材料与试剂 | 第26页 |
2.2.2 仪器与设备 | 第26页 |
2.2.3 实验方法 | 第26-30页 |
2.3 结果与讨论 | 第30-38页 |
2.3.1 正交实验优化结果 | 第30-32页 |
2.3.2 各种蛋白酶蛋白脱除效果 | 第32页 |
2.3.3 乌骨鸡黑色素的提取工艺考察结果 | 第32-35页 |
2.3.4 乌骨鸡黑色素粗品脂类物质的脱除 | 第35-38页 |
2.4 本章小结 | 第38-39页 |
第3章 NaOH-H_2O_2法降解乌骨鸡黑色素 | 第39-52页 |
3.1 引言 | 第39页 |
3.2 实验部分 | 第39-42页 |
3.2.1 材料与试剂 | 第39-40页 |
3.2.2 仪器与设备 | 第40页 |
3.2.3 实验方法 | 第40-42页 |
3.3 结果与讨论 | 第42-50页 |
3.3.1 降解产物紫外光谱分析 | 第42-43页 |
3.3.2 降解产物分子量分布结果 | 第43-48页 |
3.3.3 降解产物得率及降解率结果 | 第48-50页 |
3.4 本章小结 | 第50-52页 |
第4章 乌骨鸡黑色素及其降解产物的理化性质与红外光谱分析 | 第52-64页 |
4.1 引言 | 第52页 |
4.2 实验部分 | 第52-53页 |
4.2.1 材料与试剂 | 第52页 |
4.2.2 仪器与设备 | 第52-53页 |
4.2.3 实验方法 | 第53页 |
4.3 结果与讨论 | 第53-63页 |
4.3.1 乌骨鸡黑色素形态观察结果 | 第53-54页 |
4.3.2 元素分析结果 | 第54-55页 |
4.3.3 降解产物溶解特性 | 第55-56页 |
4.3.4 红外图谱分析结果 | 第56-63页 |
4.4 本章小结 | 第63-64页 |
第5章 乌骨鸡黑色素降解产物的分离 | 第64-79页 |
5.1 引言 | 第64页 |
5.2 实验部分 | 第64-68页 |
5.2.1 材料与试剂 | 第64页 |
5.2.2 仪器与设备 | 第64页 |
5.2.3 实验方法 | 第64-68页 |
5.3 结果与讨论 | 第68-77页 |
5.3.1 有机溶剂分离结果 | 第68页 |
5.3.2 薄层分离结果 | 第68-71页 |
5.3.3 高效液相色谱分离 | 第71-75页 |
5.3.4 丹酰氯衍生样品分析 | 第75-76页 |
5.3.5 结晶分离法结果 | 第76-77页 |
5.4 本章小结 | 第77-79页 |
第6章 乌骨鸡黑色素降解产物的表征分析 | 第79-103页 |
6.1 引言 | 第79页 |
6.2 实验材料与设备 | 第79-81页 |
6.2.1 材料与试剂 | 第79页 |
6.2.2 仪器与设备 | 第79-80页 |
6.2.3 实验方法 | 第80-81页 |
6.3 结果与讨论 | 第81-101页 |
6.3.1 化学成分预试 | 第81-83页 |
6.3.2 组分D结晶D-1的分析 | 第83-86页 |
6.3.3 有机酸的GC/MS分析结果 | 第86-88页 |
6.3.4 丹酰氯衍生样品分析结果 | 第88-90页 |
6.3.5 溶剂分离各组分Q-TOF/MS分析 | 第90-101页 |
6.4 本章小结 | 第101-103页 |
第7章 结论与展望 | 第103-107页 |
7.1 结论 | 第103-105页 |
7.2 进一步工作方向 | 第105-107页 |
致谢 | 第107-108页 |
参考文献 | 第108-116页 |
附录 | 第116-119页 |
攻读学位期间的研究成果 | 第119-120页 |