| 中文摘要 | 第4-7页 |
| Abstract | 第7-9页 |
| 缩略语/符号说明 | 第12-14页 |
| 前言 | 第14-19页 |
| 研究现状、成果 | 第14-18页 |
| 研究目的、方法 | 第18-19页 |
| 1．材料和仪器 | 第19-21页 |
| 1.1 实验动物 | 第19页 |
| 1.2 主要试剂和耗材（见表.1） | 第19-20页 |
| 1.3 主要仪器设备 | 第20-21页 |
| 2．实验方法 | 第21-24页 |
| 2.1 实验动物分组（见表.3） | 第21页 |
| 2.2 实验小鼠给药方案 | 第21页 |
| 2.3 制备BCAS模型 | 第21页 |
| 2.4 制备假手术组 | 第21-22页 |
| 2.5 BCAS模型的评估 | 第22页 |
| 2.6 Morris水迷宫行为学实验 | 第22页 |
| 2.7 组织形态学观察 | 第22-24页 |
| 3.OGD实验 | 第24-25页 |
| 4.实时荧光定量PCR（Real-time reverse transcription-quantitative RCR，RT-PCR） | 第25-27页 |
| 4.1 目的基因引物的合成 | 第25页 |
| 4.2 标本的留取 | 第25-26页 |
| 4.3 总RNA提取 | 第26页 |
| 4.4 cDNA第一链合成 | 第26-27页 |
| 4.5 实时荧光定量PCR: | 第27页 |
| 4.6 PCR结果 | 第27页 |
| 5. 蛋白质印迹分析 | 第27-29页 |
| 5.1 准备样品蛋白 | 第27-28页 |
| 5.2 SDS聚丙烯酰胺凝胶电泳 | 第28页 |
| 5.3 转膜 | 第28页 |
| 5.4 特异性抗原抗体反应 | 第28-29页 |
| 5.5 化学发光信号的检测 | 第29页 |
| 6. 统计分析 | 第29-30页 |
| 7.结果 | 第30-37页 |
| 7.1 水迷宫检测结果 | 第30-32页 |
| 7.2 RAD001对血管性痴呆小鼠脑组织病理变化的影响 | 第32-33页 |
| 7.3 RAD001对海马区胆碱能系统的影响 | 第33页 |
| 7.4 RAD001对M1、M2标记物及Iba1表达的影响 | 第33-36页 |
| 7.5 RAD001在小胶质细胞极化中的机制 | 第36-37页 |
| 8. 讨论 | 第37-46页 |
| 8.1 实验药物的选择 | 第38-39页 |
| 8.2 动物模型的选择 | 第39页 |
| 8.3 mTORC1 | 第39-40页 |
| 8.4 mTOR抑制剂 | 第40-41页 |
| 8.5 RAD001的细胞效应： | 第41-42页 |
| 8.6 RAD001的代谢副作用 | 第42-43页 |
| 8.7 血管性痴呆后水迷宫实验及RAD001的影响 | 第43页 |
| 8.8 血管性痴呆M1 / M2表型的变化及RAD001的影响 | 第43-44页 |
| 8.9 血管性痴呆胆碱能系统的变化及RAD001的影响 | 第44-46页 |
| 结论 | 第46-47页 |
| 参考文献 | 第47-58页 |
| 发表论文和参加科研情况说明 | 第58-59页 |
| 综述 | 第59-72页 |
| 参考文献 | 第65-72页 |
| 致谢 | 第72-73页 |
| 个人简历 | 第73页 |
