| 摘要 | 第4-6页 |
| abstract | 第6-7页 |
| 专用术语注释表 | 第11-12页 |
| 第一章 绪论 | 第12-20页 |
| 1.1 前言 | 第12-13页 |
| 1.2 光声成像的基本原理 | 第13-16页 |
| 1.2.1 聚焦扫描光声显微镜(PAM) | 第13-14页 |
| 1.2.2 光声计算断层扫描（PACT） | 第14-16页 |
| 1.2.3 光声内镜检查（PAE） | 第16页 |
| 1.3 体内多尺度的PAI | 第16-17页 |
| 1.4 体内多对比的PAI | 第17-20页 |
| 第二章 相关背景知识介绍 | 第20-24页 |
| 2.1 前言 | 第20页 |
| 2.2 成像基础 | 第20页 |
| 2.3 造影剂的种类 | 第20-22页 |
| 2.3.1 无机纳米颗粒 | 第21页 |
| 2.3.2 有机小分子染料 | 第21页 |
| 2.3.3 有机聚合物 | 第21-22页 |
| 2.4 论文设计思路和创新点 | 第22-24页 |
| 第三章 光声成像指导的PDI在早期血栓检测中的应用研究 | 第24-42页 |
| 3.1 引言 | 第24-26页 |
| 3.2 实验部分 | 第26-29页 |
| 3.2.1 试剂和实验仪器 | 第26-27页 |
| 3.2.2 细胞毒性 | 第27-28页 |
| 3.2.3 氯化铁诱导颈静脉非闭塞性VTE的小鼠模型 | 第28页 |
| 3.2.4 活化血小板的体外PAI | 第28页 |
| 3.2.5 体内和体外早期血栓的PAI | 第28-29页 |
| 3.2.6 cRGD-PDI结合陈旧血栓的PAI | 第29页 |
| 3.3 结果和讨论 | 第29-41页 |
| 3.3.1 cRGD-PDI NPs的制备路线及其检测早期血栓的原理 | 第29-30页 |
| 3.3.2 cRGD-PDI NPs的物理和光学性能 | 第30-32页 |
| 3.3.3 cRGD-PDI NPs PAI灵敏度的研究 | 第32-34页 |
| 3.3.4 cRGD-PDI NPs体外特异性地结合激活血小板的研究 | 第34-35页 |
| 3.3.5 cRGD-PDI NPs的细胞毒性和体内血液循环时间的研究 | 第35-37页 |
| 3.3.6 特异性靶向体内早期血栓的PAI | 第37-39页 |
| 3.3.7 早期血栓的PAI | 第39页 |
| 3.3.8 特异性靶向体外早期血栓的PAI | 第39-40页 |
| 3.3.9 早期血栓和陈旧血栓的区别 | 第40-41页 |
| 3.4 本章小结 | 第41-42页 |
| 第四章 近红外吸收FA-BODIPY纳米粒子的制备及其在光声诊疗中的应用研究 | 第42-58页 |
| 4.1 引言 | 第42-43页 |
| 4.2 实验部分 | 第43-45页 |
| 4.2.1 试剂和实验仪器 | 第43页 |
| 4.2.2 FA-BODIPY NPs的光稳定性实验 | 第43-44页 |
| 4.2.3 FA-BODIPY NPs的细胞暗毒性和光毒性实验 | 第44页 |
| 4.2.4 FA-BODIPY NPs的肿瘤富集实验 | 第44页 |
| 4.2.5 FA-BODIPY NPs的体外光热治疗实验 | 第44-45页 |
| 4.2.6 FA-BODIPY NPs的光热成像实验 | 第45页 |
| 4.2.7 FA-BODIPY NPs的体内光热治疗实验 | 第45页 |
| 4.3 结果和讨论 | 第45-56页 |
| 4.3.1 FA-BODIPY NPs的制备及其光热治疗过程 | 第45-46页 |
| 4.3.2 FA-BODIPY NPs的光学特性 | 第46-48页 |
| 4.3.3 FA-BODIPY NPs的粒径及其生理稳定性分析 | 第48-49页 |
| 4.3.4 FA-BODIPY NPs的光稳定性分析 | 第49-50页 |
| 4.3.5 FA-BODIPY NPs的细胞暗毒性和光毒性分析 | 第50-52页 |
| 4.3.6 FA-BODIPY NPs的体内EPR分析 | 第52-53页 |
| 4.3.7 FA-BODIPY NPs的体外PTT分析 | 第53-54页 |
| 4.3.8 FA-BODIPY NPs光热成像分析 | 第54-55页 |
| 4.3.9 FA-BODIPY NPs的活体治疗分析 | 第55-56页 |
| 4.4 本章小结 | 第56-58页 |
| 第五章 光声成像指导的共轭聚合物在基因治疗中的应用研究 | 第58-78页 |
| 5.1 引言 | 第58页 |
| 5.2 实验部分 | 第58-62页 |
| 5.2.1 试剂和药品 | 第58页 |
| 5.2.2 实验仪器和方法 | 第58-59页 |
| 5.2.3 Polymer@PEG2000-PFNa/siRNA复合物的制备与表征 | 第59页 |
| 5.2.4 琼脂糖凝胶电泳实验 | 第59页 |
| 5.2.5 Polymer对siRNA的荷载容量 | 第59-60页 |
| 5.2.6 细胞毒性检测 | 第60页 |
| 5.2.7 细胞摄取与成像 | 第60页 |
| 5.2.8 siRNA的释放行为 | 第60-61页 |
| 5.2.9 Polymer光声成像性能 | 第61页 |
| 5.2.10 EPR效应 | 第61页 |
| 5.2.11 siPlK1基因转染 | 第61-62页 |
| 5.2.12 活体治疗实验 | 第62页 |
| 5.3 结果与讨论 | 第62-77页 |
| 5.3.1 Polymer@PEG2000-PFNa/siRNA复合纳米粒子制备与表征 | 第62-65页 |
| 5.3.2 Polymer对siRNA的载药量 | 第65-66页 |
| 5.3.3 Polymer@siRNA/PEG2000-PFNa的稳定性 | 第66-68页 |
| 5.3.4 细胞毒性和细胞摄取成像 | 第68-70页 |
| 5.3.5 siRNA的释放行为 | 第70-72页 |
| 5.3.6 基因沉默效率的研究 | 第72-74页 |
| 5.3.7 光声成像性能的研究 | 第74-76页 |
| 5.3.8 活体治疗的研究 | 第76-77页 |
| 5.4 本章小结 | 第77-78页 |
| 第六章 总结和展望 | 第78-80页 |
| 6.1 总结 | 第78-79页 |
| 6.2 展望 | 第79-80页 |
| 参考文献 | 第80-87页 |
| 附录1 攻读硕士学位期间撰写的论文 | 第87-88页 |
| 附录2 攻读硕士学位期间参加的科研项目 | 第88-89页 |
| 致谢 | 第89页 |
