中文摘要 | 第10-18页 |
Abstract | 第18-31页 |
缩略词表 | 第32-35页 |
前言 | 第35-36页 |
第一部分 理论研究 | 第36-52页 |
1 本研究的总体思路 | 第36-39页 |
1.1 RA患者存在血小板微粒的异常表达 | 第36-37页 |
1.2 影响RA血小板微粒表达的因素 | 第37-38页 |
1.3 改善RA血小板微粒释放的治疗 | 第38-39页 |
2 PI3K/AKT、JAK/STAT信号通路与RA血小板微粒 | 第39-43页 |
2.1 PI3K/AKT信号通路激活促进PMPs释放 | 第39-40页 |
2.2 PMPs介导RA滑膜免疫炎症及血管翳形成 | 第40-41页 |
2.3 JAK/STAT信号通路介导血小板病变 | 第41页 |
2.4 JAK/STAT通路激活促进RA滑膜免疫炎症及血管翳形成 | 第41-42页 |
2.5 miR-21、PTEN连接PI3K/AKT、JAK/STAT通路,协同调控PMPs表达 | 第42-43页 |
3 脾虚与RA血瘀证关系 | 第43-49页 |
3.1 血瘀证贯穿RA病程 | 第43-46页 |
3.2 RA血小板微粒表达升高是血瘀证的重要体现 | 第46-47页 |
3.3 脾虚是RA血瘀证的发病基础 | 第47-49页 |
4 “健脾化湿通络法”可明显改善RA患者血瘀状态 | 第49-51页 |
4.1 XFC能明显改善RA关节和全身症状 | 第49-50页 |
4.2 XFC明显改善RA患者血瘀状态 | 第50-51页 |
小结 | 第51-52页 |
第二部分 实验研究 | 第52-89页 |
实验研究一 A A大鼠关节症状、体质量变化及X F C对 其影响 | 第52-62页 |
1 材料与方法 | 第52-56页 |
1.1 实验动物 | 第52页 |
1.2 主要药品及试剂 | 第52-53页 |
1.3 模型复制及给药 | 第53-54页 |
1.4 观察指标 | 第54-56页 |
1.5 统计学方法 | 第56页 |
2 研究结果 | 第56-62页 |
2.1 各组大鼠足趾肿胀度变化及XFC对其影响 | 第56-57页 |
2.2 各组大鼠AI变化及XFC对其影响 | 第57-58页 |
2.3 XFC对AA大鼠体质量的影响 | 第58-59页 |
2.4 XFC对AA大鼠关节病理形态学的影响 | 第59-60页 |
2.5 XFC对AA大鼠关节滑膜超微结构的影响 | 第60-62页 |
实验研究二 AA大鼠血小板微粒、血小板参数、血小板超微结构的变化及XFC对其影响 | 第62-68页 |
1 材料与方法 | 第62-65页 |
1.1 实验动物 | 第62页 |
1.2 主要药品及试剂 | 第62页 |
1.3 主要仪器设备 | 第62页 |
1.4 观察指标 | 第62-64页 |
1.5 统计学方法 | 第64-65页 |
2 研究结果 | 第65-68页 |
2.1 AA大鼠血小板微粒与足跖肿胀度、AI、体质量关系 | 第65页 |
2.2 XFC对AA大鼠血小板微粒、血小板参数的影响 | 第65-66页 |
2.3 XFC对AA大鼠血小板超微结构的影响 | 第66-68页 |
实验研究三 AA大鼠血清、滑膜细胞因子变化及XFC对其影响 | 第68-77页 |
1 材料与方法 | 第68-71页 |
1.1 动物 | 第68页 |
1.2 主要药品及试剂 | 第68页 |
1.3 主要仪器设备 | 第68页 |
1.4 模型复制及给药 | 第68-69页 |
1.5 观察指标 | 第69-70页 |
1.6 免疫组化法检测AA大鼠滑膜组织细胞因子表达 | 第70页 |
1.7 滑膜组织微血管密度(MVD)检测 | 第70页 |
1.8 统计学方法 | 第70-71页 |
2 研究结果 | 第71-77页 |
2.1 AA大鼠血小板微粒与血清细胞因子的关系 | 第71页 |
2.2 XFC对AA大鼠血清细胞因子的影响 | 第71-72页 |
2.3 AA大鼠血小板微粒与滑膜炎症因子及TH细胞的关系 | 第72页 |
2.4 AA大鼠血小板微粒与滑膜组织生长因子、MVD的关系 | 第72-73页 |
2.5 XFC对AA大鼠滑膜组织炎症因子及Th1/Th2的影响 | 第73-75页 |
2.6 XFC对AA大鼠滑膜组织生长因子及MVD的影响 | 第75-77页 |
实验研究四 AA大鼠血小板细胞PI3K/AKT及JAK/STAT通路变化及XFC对其影响 | 第77-88页 |
1 材料与方法 | 第77-82页 |
1.1 动物 | 第77页 |
1.2 主要药品及试剂 | 第77-79页 |
1.3 主要仪器设备 | 第79页 |
1.4 模型复制及给药 | 第79页 |
1.5 观察指标 | 第79-82页 |
1.6 统计学方法 | 第82页 |
2 研究结果 | 第82-88页 |
2.1 AA大鼠PMPs与mi R-21m RNA的关系 | 第82页 |
2.2 XFC对AA大鼠血小板mi R-21m RNA的影响 | 第82-84页 |
2.3 AA大鼠PMPs与血小板细胞JAK2/STAT3通路蛋白的关系 | 第84页 |
2.4 XFC对AA大鼠血小板细胞JAK2/STAT3信号通路的影响 | 第84-85页 |
2.5 AA大鼠PMPs与血小板细胞PTEN/PI3K/AKT信号通路关系 | 第85页 |
2.6 XFC对AA大鼠血小板细胞PTEN/PI3K/AKT信号通路的影响 | 第85-86页 |
2.7 AA大鼠PMPs与血小板细胞BAD、BCL-2 蛋白关系 | 第86-87页 |
2.8 XFC对AA大鼠血小板细胞BAD、BCL-2 蛋白的影响 | 第87-88页 |
小结 | 第88-89页 |
第三部分 讨论 | 第89-111页 |
1 RA血小板微粒变化特点及其相关性分析 | 第89-92页 |
1.1 RA血小板微粒变化特点 | 第89-90页 |
1.2 AA大鼠PMP变化的相关分析 | 第90-92页 |
2 RA血瘀证“从脾论治”的依据 | 第92-95页 |
2.1 RA血瘀证“从脾论治”理论依据 | 第92-94页 |
2.2 临床依据 | 第94页 |
2.3 实验依据 | 第94-95页 |
3 XFC方解及其对RA血瘀证的影响 | 第95-98页 |
4 采用AA动物模型模拟RA血小板微粒变化依据 | 第98-99页 |
5 主要检测指标选取的意义 | 第99-104页 |
5.1 血小板微粒 | 第99页 |
5.2 血小板参数 | 第99-100页 |
5.3 PI3K/AKT信号通路相关指标 | 第100-101页 |
5.4 JAK/STAT信号通路相关指标 | 第101页 |
5.5 BAD、BCL-2 | 第101-102页 |
5.6 RA相关细胞因子 | 第102-104页 |
6 XFC对AA大鼠的疗效分析 | 第104-107页 |
6.1 XFC能增加AA大鼠的体质量 | 第104页 |
6.2 XFC能降低AA大鼠的足跖肿胀度、AI | 第104-105页 |
6.3 XFC能抑制AA大鼠的关节滑膜免疫炎症 | 第105页 |
6.4 XFC能缓解AA大鼠关节滑膜超微结构破坏 | 第105页 |
6.5 XFC可降低AA大鼠PMPs、血小板参数表达 | 第105-106页 |
6.6 XFC能降低AA大鼠血小板超微结构破坏 | 第106页 |
6.7 XFC能调节AA大鼠血清炎症因子平衡 | 第106-107页 |
6.8 XFC能调节AA大鼠滑膜组织炎症因子平衡 | 第107页 |
6.9 XFC能调节AA大鼠滑膜生长因子、抑制血管新生 | 第107页 |
7 XFC对AA大鼠血小板细胞JAK/STAT、PI3K/AKT通路的影响 | 第107-108页 |
7.1 XFC对AA大鼠血小板细胞mi R-21 的影响的影响 | 第107页 |
7.2 XFC对AA大鼠血小板细胞JAK/STAT、PI3K/AKT通路蛋白的影响 | 第107-108页 |
8 XFC抑制血小板微粒释放的作用机制 | 第108-111页 |
8.1 改善滑膜病变,抑制PMPs表达 | 第108页 |
8.2 调节细胞因子平衡,抑制PMPs表达 | 第108-109页 |
8.3 改善血小板参数、超微结构,抑制PMPs表达 | 第109页 |
8.4 抑制IL-6/JAK2/STAT3信号通路,抑制PMPs表达 | 第109页 |
8.5 调控mi R-21、PTEN表达,抑制PMPs表达 | 第109-110页 |
8.6 调节PI3K/AKT信号通路,抑制PMPs表达 | 第110页 |
8.7 上调BAD表达,下调BCL-2 表达,抑制PMPs表达 | 第110-111页 |
结语 | 第111-112页 |
参考文献 | 第112-124页 |
附录 | 第124-136页 |
参考文献 | 第130-136页 |
在校期间发表论文情况 | 第136-137页 |
致谢 | 第137页 |