| 摘要 | 第5-7页 |
| Abstract | 第7-9页 |
| 第一章 绪论 | 第14-36页 |
| 1.1 聚羟基脂肪酸酯（PHA）简介 | 第14-19页 |
| 1.1.1 聚羟基脂肪酸酯（PHA）的结构与分类 | 第14-15页 |
| 1.1.2 聚羟基脂肪酸酯（PHA）特性与应用 | 第15-17页 |
| 1.1.3 聚羟基脂肪酸酯（PHA）生物降解途径 | 第17-18页 |
| 1.1.4 聚羟基脂肪酸酯（PHA）合成方法 | 第18-19页 |
| 1.2 聚羟基脂肪酸酯（PHA）的分离提取 | 第19-20页 |
| 1.3 聚羟基脂肪酸酯（PHA）的检测 | 第20-23页 |
| 1.3.1 染色法 | 第21页 |
| 1.3.2 荧光分光光度计法 | 第21页 |
| 1.3.3 核磁共振（NMR）法 | 第21-22页 |
| 1.3.4 重量分析法 | 第22页 |
| 1.3.5 气相色谱（GC）法 | 第22页 |
| 1.3.6 高效液相色谱（HPLC）法 | 第22-23页 |
| 1.4 聚羟基脂肪酸酯（PHA）生物合成的研究 | 第23-34页 |
| 1.4.1 聚羟基脂肪酸酯（PHA）与微生物的关系 | 第23页 |
| 1.4.2 聚羟基脂肪酸酯（PHA）生物合成途径 | 第23-25页 |
| 1.4.3 聚羟基脂肪酸酯（PHA）单一菌种发酵研究 | 第25-27页 |
| 1.4.4 聚羟基脂肪酸酯（PHA）重组菌发酵研究 | 第27-28页 |
| 1.4.5 聚羟基脂肪酸酯（PHA）微生物混合发酵研究 | 第28-29页 |
| 1.4.6 聚羟基脂肪酸酯（PHA）生物合成的影响因素 | 第29-30页 |
| 1.4.7 微生物合成PHA的发酵动力学 | 第30-34页 |
| 1.5 本论文的研究目的、意义和研究内容 | 第34-36页 |
| 1.5.1 研究目的和意义 | 第34-35页 |
| 1.5.2 研究内容 | 第35-36页 |
| 第二章 地衣芽孢杆菌JH8合成PHA能力的检测与PHA产物的定性分析 | 第36-54页 |
| 2.1 简介 | 第36-37页 |
| 2.2 实验材料 | 第37页 |
| 2.2.1 实验菌种 | 第37页 |
| 2.2.2 培养基 | 第37页 |
| 2.2.3 主要试剂与仪器 | 第37页 |
| 2.3 实验方法 | 第37-43页 |
| 2.3.1 菌种保藏 | 第37-38页 |
| 2.3.2 JH8菌株的PHA合成能力检测 | 第38-41页 |
| 2.3.3 生物量的测定及PHA的分离提取 | 第41-42页 |
| 2.3.4 气相色谱法（GC）分析PHA单体组成与含量 | 第42页 |
| 2.3.5 傅里叶红外衍射法（FTIR）分析PHA结构 | 第42-43页 |
| 2.3.6 核磁共振法（NMR）分析PHA结构 | 第43页 |
| 2.3.7 热重（TGA）分析 | 第43页 |
| 2.4 结果与讨论 | 第43-52页 |
| 2.4.1 JH8合成PHA能力的检测 | 第43-46页 |
| 2.4.2 气相色谱（GC）分析 | 第46-48页 |
| 2.4.3 傅立叶红外光谱（FTIR）分析 | 第48-49页 |
| 2.4.4 核磁共振（NMR）分析 | 第49-51页 |
| 2.4.5 产物的热重分析 | 第51-52页 |
| 2.5 本章小结 | 第52-54页 |
| 第三章 地衣芽孢杆菌JH8产PHA发酵条件的初步优化 | 第54-65页 |
| 3.1 简介 | 第54页 |
| 3.2 实验材料 | 第54-55页 |
| 3.2.1 实验菌种 | 第54页 |
| 3.2.2 培养基 | 第54-55页 |
| 3.2.3 主要试剂与仪器 | 第55页 |
| 3.3 实验方法 | 第55-56页 |
| 3.3.1 菌种保藏 | 第55页 |
| 3.3.2 JH8菌株的PHA合成能力检测 | 第55页 |
| 3.3.3 气相色谱法（GC）分析PHA含量 | 第55页 |
| 3.3.4 液相色谱法分析发酵液成分 | 第55页 |
| 3.3.5 JH8的生长及PHB积累曲线测定 | 第55-56页 |
| 3.3.6 不同因素对JH8生长及PHB积累的影响 | 第56页 |
| 3.4 结果与讨论 | 第56-64页 |
| 3.4.1 JH8的生长及PHA积累曲线 | 第56-59页 |
| 3.4.2 碳源对JH8生长及PHA积累的影响 | 第59-60页 |
| 3.4.3 温度对JH8生长及PHA积累的影响 | 第60-62页 |
| 3.4.4 初始pH对JH8生长及PHA积累的影响 | 第62-64页 |
| 3.5 本章小结 | 第64-65页 |
| 第四章 嗜热混合菌种JH8-TAD1发酵产PHA的研究 | 第65-92页 |
| 4.1 简介 | 第65-66页 |
| 4.2 实验材料 | 第66页 |
| 4.2.1 实验菌种 | 第66页 |
| 4.2.2 培养基 | 第66页 |
| 4.2.3 主要试剂与仪器 | 第66页 |
| 4.3 实验方法 | 第66-67页 |
| 4.3.1 菌种保藏 | 第66页 |
| 4.3.2 生物量的测定及PHA的分离提取 | 第66页 |
| 4.3.3 气相色谱法分析PHA的含量 | 第66页 |
| 4.3.4 液相色谱法分析发酵液成分 | 第66-67页 |
| 4.3.5 不同因素对嗜热混合菌种JH8-TAD1生长及PHA积累的影响 | 第67页 |
| 4.4 实验设计 | 第67-69页 |
| 4.4.1 Plackett-Burman实验设计 | 第67-68页 |
| 4.4.2 最陡爬坡实验 | 第68页 |
| 4.4.3 响应面Box-Behnken设计 | 第68-69页 |
| 4.4.4 优化培养基验证实验 | 第69页 |
| 4.5 结果与讨论 | 第69-90页 |
| 4.5.1 不同因素对混合菌JH8-TAD1生长及PHA积累的影响 | 第69-74页 |
| 4.5.2 Plackett-Burman实验设计结果与分析 | 第74-75页 |
| 4.5.3 最陡爬坡实验 | 第75-76页 |
| 4.5.4 响应面分析法优化发酵培养基 | 第76-82页 |
| 4.5.5 回归模型结果验证 | 第82-83页 |
| 4.5.6 混合菌JH8-TAD1合成PHA的发酵动力学模型 | 第83-90页 |
| 4.6 本章小结 | 第90-92页 |
| 第五章 嗜热混合菌JH8-TAD1发酵产PHA的生物扩大培养与优化 | 第92-104页 |
| 5.1 简介 | 第92-93页 |
| 5.2 实验材料 | 第93-95页 |
| 5.2.1 实验菌种 | 第93页 |
| 5.2.2 培养基 | 第93-94页 |
| 5.2.3 主要试剂与仪器 | 第94-95页 |
| 5.3 实验方法 | 第95-96页 |
| 5.3.1 生物量的测定及PHA的分离提取 | 第95页 |
| 5.3.2 气相色谱法分析PHA的含量 | 第95页 |
| 5.3.3 液相色谱法分析发酵液成分 | 第95页 |
| 5.3.4 生物发酵罐的扩大培养 | 第95-96页 |
| 5.3.5 混合菌JH8-TAD1扩大培养的发酵动力学模型 | 第96页 |
| 5.4 结果与讨论 | 第96-103页 |
| 5.4.1 混合菌JH8-TAD1合成PHA分批发酵 | 第96-98页 |
| 5.4.2 混合菌JH8-TAD1扩大培养的发酵动力学模型 | 第98-101页 |
| 5.4.3 混合菌JH8-TAD1扩大培养补料分批发酵合成PHA | 第101-103页 |
| 5.5 本章小结 | 第103-104页 |
| 结论与展望 | 第104-107页 |
| 1 主要研究结论 | 第104-105页 |
| 2 本论文的创新之处 | 第105页 |
| 3 展望 | 第105-107页 |
| 参考文献 | 第107-122页 |
| 攻读博士学位期间取得的研究成果 | 第122-124页 |
| 致谢 | 第124-125页 |
| 附件 | 第125页 |
