| 中文摘要 | 第10-12页 |
| ABSTRACT | 第12-13页 |
| 第一章 综述 | 第14-20页 |
| 1.1 镉胁迫机体的分子机制 | 第14-17页 |
| 1.2 分化抑制因子 1（ID1） | 第17-18页 |
| 1.3 本论文的研究内容和研究意义 | 第18-20页 |
| 第二章 急性镉胁迫斑马鱼id1及mtf基因表达量分析 | 第20-30页 |
| 2.1 材料与方法 | 第21-23页 |
| 2.1.1 实验材料 | 第21页 |
| 2.1.2 实验试剂 | 第21页 |
| 2.1.3 实验仪器 | 第21页 |
| 2.1.4 镉胁迫处理 | 第21页 |
| 2.1.5 RNA提取及cDNA模板制备 | 第21-22页 |
| 2.1.6 实时荧光定量PCR | 第22-23页 |
| 2.1.7 统计分析 | 第23页 |
| 2.2 结果 | 第23-26页 |
| 2.2.1 肝脏中基因表达量变化 | 第23-24页 |
| 2.2.2 鳃组织中基因表达量变化 | 第24页 |
| 2.2.3 肠组织中基因表达量变化 | 第24-25页 |
| 2.2.4 肾脏组织中基因表达量变化 | 第25页 |
| 2.2.5 脾脏组织中基因表达量变化 | 第25-26页 |
| 2.3 讨论 | 第26-30页 |
| 第三章 id1启动子生物信息学分析及相关质粒构建 | 第30-40页 |
| 3.1 材料与方法 | 第30-35页 |
| 3.1.1 实验试剂 | 第30-31页 |
| 3.1.2 实验仪器 | 第31页 |
| 3.1.3 质粒构建 | 第31-35页 |
| 3.2 结果 | 第35-36页 |
| 3.3 讨论 | 第36-40页 |
| 第四章 MTF1转录因子对id1启动子活性的影响 | 第40-48页 |
| 4.1 材料与方法 | 第40-42页 |
| 4.1.1 实验材料 | 第40页 |
| 4.1.2 实验试剂 | 第40-41页 |
| 4.1.3 实验仪器 | 第41页 |
| 4.1.4 实验方法 | 第41-42页 |
| 4.2 结果 | 第42-44页 |
| 4.2.1 不同剂量MTF1对id1启动子活性的影响 | 第42页 |
| 4.2.2 MRE对id1启动子活性影响 | 第42-43页 |
| 4.2.3 MTF1突变体dnMTF1对id1启动子活性影响 | 第43-44页 |
| 4.3 讨论 | 第44-48页 |
| 第五章 不同长度id1启动子体内、外活性分析 | 第48-56页 |
| 5.1 材料与方法 | 第49-50页 |
| 5.1.1 材料试剂 | 第49页 |
| 5.1.2 质粒构建 | 第49-50页 |
| 5.1.3 细胞培养及转染 | 第50页 |
| 5.1.4 双荧光素酶报告系统检测 | 第50页 |
| 5.1.5 胚胎显微注射 | 第50页 |
| 5.2 结果 | 第50-53页 |
| 5.2.1 质粒构建 | 第50-51页 |
| 5.2.2 不同长度启动子在EPC细胞中的活性 | 第51-52页 |
| 5.2.3 不同长度启动子在斑马鱼体内的活性 | 第52-53页 |
| 5.3 讨论 | 第53-56页 |
| 参考文献 | 第56-67页 |
| 攻读学位期间取得的研究成果 | 第67-68页 |
| 致谢 | 第68-69页 |
| 个人简况及联系方式 | 第69-70页 |
