| 摘要 | 第5-8页 |
| Abstract | 第8-10页 |
| 第一章 绪论 | 第18-33页 |
| 1.1 引言 | 第18-31页 |
| 1.1.1 研究背景 | 第18-20页 |
| 1.1.2 国内外研究现状及评价 | 第20-31页 |
| 1.2 研究目标和主要研究内容 | 第31-32页 |
| 1.2.1 关键的科学问题与研究目标 | 第31页 |
| 1.2.2 主要研究内容 | 第31-32页 |
| 1.3 研究技术路线 | 第32-33页 |
| 第二章 格孢腔目（Pleosporales）真菌多样性和促生功能研究 | 第33-60页 |
| 2.1 材料与方法 | 第33-44页 |
| 2.1.1 盐生植物及土壤样品的采集 | 第33-34页 |
| 2.1.2 内生真菌和根际真菌的分离纯化和保存 | 第34-36页 |
| 2.1.3 真菌DNA提取、PCR扩增和系统发育分析 | 第36-38页 |
| 2.1.4 格孢腔目真菌体外耐性测试 | 第38页 |
| 2.1.5 不同氮源条件下格孢腔目真菌生长情况的测定 | 第38-39页 |
| 2.1.6 不同氮源条件下植物与格孢腔目真菌共培养试验 | 第39-40页 |
| 2.1.7 植物根组织染色和显微观察 | 第40-41页 |
| 2.1.8 格孢腔目真菌与北美枫香的共培养实验 | 第41-42页 |
| 2.1.9 弯孢霉菌孢子形态观察 | 第42-43页 |
| 2.1.10 弯孢霉菌对北美枫香和杨树幼苗生长和耐盐的影响 | 第43-44页 |
| 2.2 结果与分析 | 第44-57页 |
| 2.2.1 SSU、LSU和tef1基因片段联合系统发育分析 | 第44-48页 |
| 2.2.2 格孢腔目真菌生物学特性 | 第48页 |
| 2.2.3 不同氮源对格孢腔目真菌生长的影响 | 第48-51页 |
| 2.2.4 不同氮源对植物与格孢腔目真菌共培养结果的影响 | 第51-53页 |
| 2.2.5 格孢腔目真菌根系定殖模式 | 第53-54页 |
| 2.2.6 格孢腔目真菌对北美枫香幼苗生长的促进作用 | 第54页 |
| 2.2.7 弯孢霉菌孢子形态观察 | 第54-55页 |
| 2.2.8 弯孢霉菌促进北美枫香、毛白杨幼苗生长和耐盐 | 第55-57页 |
| 2.3 本章讨论与小结 | 第57-60页 |
| 第三章 盐地碱蓬种子际真菌群落结构分析及芽孢霉生态学特性研究 | 第60-76页 |
| 3.1 材料与方法 | 第60-65页 |
| 3.1.1 植物材料以及种子表面消毒 | 第60页 |
| 3.1.2 种子总DNA提取、PCR扩增 | 第60-62页 |
| 3.1.3 焦磷酸测序数据分析 | 第62页 |
| 3.1.4 种子内生真菌的分离纯化与鉴定 | 第62页 |
| 3.1.5 芽孢霉菌显微形态观察 | 第62-63页 |
| 3.1.6 芽孢霉菌对宿主植物碱蓬种子萌发的影响 | 第63-64页 |
| 3.1.7 扫描电镜观察芽孢霉在盐地碱蓬种子萌发过程中的侵染定殖特征 | 第64页 |
| 3.1.8 芽孢霉菌对非宿主植物北美枫香幼苗生长的影响 | 第64页 |
| 3.1.9 种子附生真菌的分离培养及其对碱蓬种子萌发的影响 | 第64-65页 |
| 3.2 结果与分析 | 第65-73页 |
| 3.2.1 种子内生真菌群落结构和优势菌群 | 第65-67页 |
| 3.2.2 种子可培养真菌的分离鉴定 | 第67页 |
| 3.2.3 芽孢霉菌形态学描述 | 第67-68页 |
| 3.2.4 芽孢霉菌促进碱蓬种子萌发 | 第68-71页 |
| 3.2.5 芽孢霉菌促进北美枫香幼苗生长 | 第71-72页 |
| 3.2.6 种子附生真菌及其对碱蓬种子萌发的影响 | 第72-73页 |
| 3.3 本章小结与讨论 | 第73-76页 |
| 第四章 根际和内生细菌的培养及产ACC脱氨酶细菌的快速筛选 | 第76-100页 |
| 4.1 材料与方法 | 第76-82页 |
| 4.1.1 植物样品采集 | 第76-77页 |
| 4.1.2 培养基配置 | 第77-78页 |
| 4.1.3 内生细菌和根际细菌的分离纯化与保存 | 第78-79页 |
| 4.1.4 产ACC脱氨酶细菌的分离 | 第79-80页 |
| 4.1.5 细菌DNA提取、16S r RNA片段PCR扩增和分子鉴定 | 第80页 |
| 4.1.6 acd S基因扩增和克隆测序 | 第80-82页 |
| 4.1.7 基于 16S r RNA和acd S基因构建系统发育树 | 第82页 |
| 4.2 结果与分析 | 第82-98页 |
| 4.2.1 盐生植物和杨树根际根内生细菌分离情况 | 第82-90页 |
| 4.2.2 具ACC脱氨酶活性细菌筛选结果 | 第90-94页 |
| 4.2.3 具ACC脱氨酶活性细菌 16S r RNA序列的分析 | 第94-95页 |
| 4.2.4 具ACC脱氨酶活性细菌acd S序列的分析 | 第95-98页 |
| 4.3 本章讨论与小结 | 第98-100页 |
| 第五章 土壤微生物组几种提取方法的比较研究 | 第100-120页 |
| 5.1 材料与方法 | 第101-104页 |
| 5.1.1 土样采集 | 第101页 |
| 5.1.2 土壤微生物组提取方案 | 第101-102页 |
| 5.1.3 高通量测序分析提取所得微生物群落结构 | 第102-103页 |
| 5.1.4 菌落形成单位（cfu）计数 | 第103页 |
| 5.1.5 BIOLOG方法检测微生物代谢活性 | 第103-104页 |
| 5.2 结果与分析 | 第104-117页 |
| 5.2.1 不同提取方法对微生物多样性和群落结构的影响 | 第104-111页 |
| 5.2.2 不同提取方法对可培养细菌和真菌数量的影响 | 第111-112页 |
| 5.2.3 不同提取方法对微生物群落代谢活性的影响 | 第112-117页 |
| 5.3 本章讨论与小结 | 第117-120页 |
| 第六章 以两种杨树无性系为例建立促生耐盐林木根际微生物组工程筛选体系 | 第120-134页 |
| 6.1 材料与方法 | 第120-126页 |
| 6.1.1 土样采集 | 第120-121页 |
| 6.1.2 杨树幼苗无性系组培扩繁 | 第121-122页 |
| 6.1.3 根际土壤微生物组样品提取制备 | 第122-123页 |
| 6.1.4 根际微生物组与杨树幼苗共培养体系的建立 | 第123-125页 |
| 6.1.5 功能性菌群的多轮筛选 | 第125-126页 |
| 6.2 结果与分析 | 第126-131页 |
| 6.2.1 杨树无性系幼苗扩繁情况 | 第126页 |
| 6.2.2 根际微生物组对NL895杨幼苗生长影响 | 第126-127页 |
| 6.2.3 根际微生物组对NL895杨幼苗耐盐能力的影响 | 第127-128页 |
| 6.2.4 根际微生物组对毛白杨幼苗生长和耐盐能力的影响 | 第128-130页 |
| 6.2.5 耐盐型毛白杨根际微生物组二轮筛选 | 第130-131页 |
| 6.3 本章讨论与小结 | 第131-134页 |
| 第七章 结论与展望 | 第134-137页 |
| 7.1 结论 | 第134-136页 |
| 7.1.1 共生微生物资源的正向筛选 | 第134-135页 |
| 7.1.2 共生微生物菌群的反向筛选 | 第135-136页 |
| 7.2 展望 | 第136-137页 |
| 附录 | 第137-142页 |
| 参考文献 | 第142-157页 |
| 在读期间的学术研究 | 第157-159页 |
| 致谢 | 第159页 |
