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脂蛋白(a)与重组不可分型流感嗜血杆菌天冬氨酸酶的相互作用

摘要第3-4页
Abstract第4页
1 前言第12-19页
    1.1 不可分型流感嗜血杆菌的主要致病机制第12页
    1.2 NTHi致病性与人纤溶酶原的关系第12-15页
        1.2.1 人纤溶酶原的结构和功能第12-13页
        1.2.2 人Plg的激活剂和抑制剂第13-14页
        1.2.3 NTHi利用宿主Plg致病的作用机制第14-15页
        1.2.4 NTHi的纤溶酶原受体第15页
    1.3 脂蛋白(a)第15-17页
        1.3.1 Lp(a)的结构第15-16页
        1.3.2 Lp(a)的生理功能第16页
        1.3.3 Lp(a)与Plg之间的关系第16-17页
    1.4 立题依据第17-19页
2 实验材料第19-24页
    2.1 主要仪器设备第19页
    2.2 化学试剂第19-21页
    2.3 质粒和菌株第21页
    2.4 PCR引物第21页
    2.5 常用溶液第21-22页
    2.6 亲和层析填料及洗脱缓冲液第22页
    2.7 电泳试剂的配制第22-23页
    2.8 转膜缓冲液的配制第23页
    2.9 培养基的配制第23-24页
3 实验方法第24-40页
    3.1 rASP、rASP△K两种重组蛋白的表达与纯化第24-35页
        3.1.1 NTHi(ATCC49247)基因组DNA的提取第24-25页
        3.1.2 琼脂糖凝胶电泳第25-26页
        3.1.3 ASP、ASP△K基因的扩增第26-27页
        3.1.4 ASP、ASP△K基因扩增产物的纯化第27页
        3.1.5 ASP、ASP△K基因片段的酶切与纯化第27-28页
        3.1.6 pASK-IBA37质粒的提取第28-29页
        3.1.7 pASK-IBA37载体的酶切与纯化第29-30页
        3.1.8 酶切后的ASP基因片段与pASK-IBA37载体的连接第30页
        3.1.9 酶切后的ASP△K基因片段与pASK-IBA37载体的连接第30页
        3.1.10 ASP基因与pASK-IBA37载体连接产物的转化和抗性筛选第30页
        3.1.11 ASP△K基因与pASK-IBA37载体连接产物的转化和抗性筛选第30页
        3.1.12 菌落PCR鉴定阳性菌落第30-31页
        3.1.13 阳性菌落的扩大培养及菌种保存第31页
        3.1.14 阳性克隆中重组质粒的提取、鉴定第31-32页
        3.1.15 基因序列的测定第32页
        3.1.16 工程菌的培养第32页
        3.1.17 表达产物的SDS-PAGE分析第32-33页
        3.1.18 rASP、rASP△K的纯化第33-34页
        3.1.19 浓缩后的rASP、rASP△K的Western blot检测第34页
        3.1.20 rASP、rASP△K浓度的测定第34页
        3.1.21 rASP、rASP△K活性的测定第34-35页
    3.2 rASP与Lp(a)、LDL的结合实验(ELISA)第35-36页
    3.3 Lp(a)与rASP结合机制的研究第36-39页
        3.3.1 Lp(a)与rASP、rASP△K的结合(ELISA)第36页
        3.3.2 EACA对Lp(a)与rASP结合的抑制作用(ELISA)第36-37页
        3.3.3 rASP、rASP△K与血浆Lp(a)结合的亲和层析试验第37-38页
        3.3.4 rASP、rASP△K与血浆Lp(a)、纯Lp(a)的结合试验(ELISA)第38-39页
    3.4 Plg与rASP、rASP△K的结合试验(ELISA)第39页
    3.5 Lp(a)对Plg与rASP结合的抑制作用(Binding-inhibition ELISA)第39-40页
4 结果与分析第40-56页
    4.1 pASK-IBA37-ASP及pASK-IBA37-ASP△K表达载体的构建第40-45页
        4.1.1 NTHi(ATCC49247)基因组的提取第40-41页
        4.1.2 ASP基因的扩增第41页
        4.1.3 ASP△K基因的扩增第41页
        4.1.4 pASK-IBA37载体的酶切及纯化第41-42页
        4.1.5 ASP基因的酶切、连接和转化结果的鉴定第42-43页
        4.1.6 ASP△K基因的酶切、连接和转化结果的鉴定第43-44页
        4.1.7 ASP、ASP△K基因序列测定结果第44-45页
    4.2 rASP、ASP△K的诱导表达、纯化、含量及活性的测定第45-50页
        4.2.1 rASP蛋白的诱导表达第45页
        4.2.2 rASP蛋白的纯化第45-47页
        4.2.3 rASP△K蛋白的诱导表达第47页
        4.2.4 rASP△K蛋白的纯化第47-49页
        4.2.5 纯化、浓缩后重组蛋白的Western Blot检测第49页
        4.2.6 rASP、rASP△K蛋白含量的测定第49-50页
        4.2.7 rASP、rASP△K蛋白活性的测定第50页
    4.3 rASP与Lp(a)结合作用及结合机制的研究第50-54页
        4.3.1 rASP与Lp(a)、LDL的结合试验第50-51页
        4.3.2 EACA对Lp(a)与rASP结合的抑制作用第51-52页
        4.3.3 rASP、rASP△K与Lp(a)的结合试验第52页
        4.3.4 rASP、rASP△K与血浆Lp(a)结合的亲和层析实验第52-53页
        4.3.5 rASP、rASP△K与血浆Lp(a)、纯Lp(a)的结合试验第53-54页
    4.4 Plg与rASP、rASP△K的结合试验第54-55页
    4.5 Lp(a)对rASP与Plg结合抑制作用第55-56页
5 讨论第56-57页
6 结论第57-58页
致谢第58-59页
参考文献第59-66页
附录第66-71页
作者简介第71页

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