| 摘要 | 第1-6页 |
| ABSTRACT | 第6-11页 |
| 第一章 猪流行性腹泻和猪传染性胃肠炎研究概况 | 第11-22页 |
| 1 猪流行性腹泻研究进展 | 第11-15页 |
| ·概述 | 第11页 |
| ·生物学特征 | 第11页 |
| ·致病机理 | 第11-12页 |
| ·流行情况 | 第12-13页 |
| ·临床症状和病理变化 | 第13页 |
| ·检测方法研究进展 | 第13-15页 |
| 2 猪传染性胃肠炎研究进展 | 第15-19页 |
| ·概述 | 第15页 |
| ·生物学特性 | 第15-16页 |
| ·致病机理 | 第16页 |
| ·流行情况 | 第16-17页 |
| ·临床症状和病理变化 | 第17页 |
| ·检测方法研究进展 | 第17-19页 |
| 3 液相芯片(LiquiChip)检测技术 | 第19-20页 |
| 4 小结 | 第20-22页 |
| 第二章PEDV双抗夹心ELISA及Luminex检测方法建立 | 第22-34页 |
| 1 材料 | 第22-24页 |
| ·病毒、蛋白、抗体 | 第22页 |
| ·主要试剂 | 第22页 |
| ·主要试剂的配置 | 第22-23页 |
| ·ELISA试剂 | 第22-23页 |
| ·抗体粗提和纯化试剂 | 第23页 |
| ·聚丙烯酰胺凝胶电泳（SDS-PAGE）试剂 | 第23页 |
| ·主要仪器 | 第23-24页 |
| 2 方法 | 第24-28页 |
| ·兔抗PEDV高免血清的制备 | 第24页 |
| ·兔抗PEDV IgG的纯化 | 第24页 |
| ·兔抗PEDVIgG的粗提和纯化 | 第24页 |
| ·纯化IgG抗体缓冲液置换 | 第24页 |
| ·抗PEDV IgG生物素标记 | 第24-25页 |
| ·HABA/Avidin检测标记效率 | 第25页 |
| ·PEDV双抗夹心ELISA检测方法的建立 | 第25页 |
| ·生物素亲和素系统双抗体夹心ELISA检测方法的优化 | 第25-26页 |
| ·最低检出限量 | 第26页 |
| ·临床样品检测 | 第26页 |
| ·PEDV Luminex检测 | 第26-28页 |
| 3 结果 | 第28-32页 |
| ·兔抗PEDV高免血清的效价测定 | 第28页 |
| ·抗PEDV IgG抗体纯化 | 第28-29页 |
| ·抗PEDV IgG抗体生物素标记检测 | 第29页 |
| ·双抗夹心ELISA检测体系建立及优化 | 第29-30页 |
| ·临床样品检测 | 第30页 |
| ·微球和单抗偶联验证 | 第30页 |
| ·PEDV Luminex检测方法建立及优化 | 第30-32页 |
| 4 讨论 | 第32-34页 |
| 第三章TGEV双抗夹心ELISA及Luminex检测方法建立 | 第34-41页 |
| 1 材料 | 第34页 |
| ·细胞、病毒、抗体 | 第34页 |
| ·主要试剂 | 第34页 |
| ·主要试剂的配制 | 第34页 |
| ·主要仪器 | 第34页 |
| 2 方法 | 第34-36页 |
| ·TGEV的增殖 | 第34页 |
| ·PEG法纯化病毒 | 第34-35页 |
| ·兔抗TGEV高免血清的制备 | 第35页 |
| ·抗TGEV IgG的纯化 | 第35页 |
| ·抗TGEV IgG生物素标记及标记效率检测 | 第35页 |
| ·TGEV双抗夹心ELISA检测方法的建立与条件优化 | 第35页 |
| ·敏感性检测 | 第35页 |
| ·临床样品检测 | 第35页 |
| ·TGEV Luminex检测 | 第35-36页 |
| 3 结果 | 第36-38页 |
| ·兔抗TGEV高免血清效价测定 | 第36页 |
| ·抗TGEV IgG纯化 | 第36页 |
| ·抗TGEV IgG生物素标记检测 | 第36页 |
| ·TGEV双抗夹心ELSIA检测体系的建立及优化 | 第36-37页 |
| ·临床样品检测 | 第37页 |
| ·微球和抗TGEV S蛋白单抗偶联验证结果 | 第37-38页 |
| ·TGEV Luminex检测方法的建立及优化 | 第38页 |
| 4 讨论 | 第38-41页 |
| 全文总结 | 第41-42页 |
| 参考文献 | 第42-48页 |
| 致谢 | 第48页 |
