| 中文摘要 | 第1-9页 |
| 英文摘要 | 第9-11页 |
| 缩略语 | 第11-12页 |
| 引言 | 第12-13页 |
| 第一章 文献综述 | 第13-32页 |
| 1 植物组织培养研究进展 | 第13-22页 |
| 1．1 植物组织培养技术的产生与发展 | 第13-14页 |
| 1．2 植物组织培养的应用 | 第14-17页 |
| 1．2．1 在植物育种上的应用 | 第14-15页 |
| 1．2．2 快繁和植株再生体系的建立 | 第15-16页 |
| 1．2．3 通过组织培养的手段获得无病原菌的或无病毒的植株 | 第16页 |
| 1．2．4 在植物有用产物生产上的应用 | 第16-17页 |
| 1．3 苹果组织培养研究进展 | 第17-19页 |
| 1．3．1 茎尖培养 | 第17页 |
| 1．3．2 花药培养 | 第17-18页 |
| 1．3．3 胚乳的培养 | 第18页 |
| 1．3．4 离体叶片的培养 | 第18页 |
| 1．3．5 原生质体培养 | 第18-19页 |
| 1．4 愈伤组织培养的研究 | 第19-22页 |
| 1．4．1 愈伤组织的分类 | 第19-20页 |
| 1．4．2 影响愈伤组织诱导的因素 | 第20-22页 |
| 1．4．2．1 基因型 | 第20页 |
| 1．4．2．2 外植体类型 | 第20-21页 |
| 1．4．2．3 培养条件 | 第21-22页 |
| 2 体细胞无性系变异研究现状 | 第22-26页 |
| 2．1 体细胞无性系变异机制 | 第22-23页 |
| 2．1．1 染色体数目和结构变异 | 第22页 |
| 2．1．2 基因突变 | 第22-23页 |
| 2．1．3 基因扩增和丢失 | 第23页 |
| 2．1．4 基因重排 | 第23页 |
| 2．1．5 转座子激活 | 第23页 |
| 2．2 体细胞无性系变异的来源及影响因素 | 第23-24页 |
| 2．2．1 外植体来源 | 第23-24页 |
| 2．2．2 离体培养条件 | 第24页 |
| 2．2．3 离体培养时间 | 第24页 |
| 2．3 体细胞无性系变异的检测 | 第24-26页 |
| 2．3．1 形态标记 | 第25页 |
| 2．3．2 细胞学标记 | 第25页 |
| 2．3．3 生化标记 | 第25-26页 |
| 2．3．4 分子标记 | 第26页 |
| 3 SSR分子标记技术及其应用 | 第26-32页 |
| 3．1 SSR的发现及命名 | 第27页 |
| 3．2 微卫星形成机理及类型 | 第27页 |
| 3．2．1 形成原因 | 第27页 |
| 3．2．2 类型 | 第27页 |
| 3．3 微卫星 DNA的功能 | 第27-28页 |
| 3．4 微卫星 DNA位点多态性的分析 | 第28页 |
| 3．4．1 检测原理 | 第28页 |
| 3．4．2 检测方法 | 第28页 |
| 3．5 SSR技术的应用 | 第28-30页 |
| 3．5．1 基因定位 | 第29页 |
| 3．5．2 系谱分析及分子标记育种 | 第29页 |
| 3．5．3 构建微卫星图谱 | 第29页 |
| 3．5．4 数量性状基因位点(QTLs)分析 | 第29-30页 |
| 3．5．5 种质资源的保存及利用 | 第30页 |
| 3．6 SSR技术在果树上的应用进展 | 第30-32页 |
| 第二章 嘎拉苹果单芽系组培苗的获得 | 第32-42页 |
| 1 材料与方法 | 第32-36页 |
| 1．1 材料 | 第32-33页 |
| 1．1．1 植物材料 | 第32页 |
| 1．1．2 培养基 | 第32-33页 |
| 1．2 方法 | 第33-36页 |
| 1．2．1 组培苗的获得 | 第33-35页 |
| 1．2．1．1 外植体的接种 | 第33-34页 |
| 1．2．1．2 防止褐化的措施 | 第34-35页 |
| 1．2．2 组培苗的快速繁殖 | 第35-36页 |
| 1．2．2．1 激素浓度配比的选择 | 第35页 |
| 1．2．2．2 继代周期的选择 | 第35-36页 |
| 2 结果与分析 | 第36-40页 |
| 2．1 外植体不同消毒处理的效果 | 第36页 |
| 2．2 不同防褐化处理的效果 | 第36-38页 |
| 2．3 激素浓度配比对快繁的影响 | 第38-39页 |
| 2．4 继代周期对芽增殖和生长的影响 | 第39-40页 |
| 3 讨论 | 第40-42页 |
| 第三章 嘎拉苹果叶片愈伤组织的诱导 | 第42-57页 |
| 1 材料与方法 | 第42-47页 |
| 1．1 材料及试验条件 | 第42-43页 |
| 1．1．1 植物材料 | 第42页 |
| 1．1．2 培养基及试验所用药剂 | 第42页 |
| 1．1．3 培养室条件 | 第42-43页 |
| 1．2 方法 | 第43-47页 |
| 1．2．1 外植体的接种 | 第43页 |
| 1．2．2 愈伤组织的诱导 | 第43-47页 |
| 1．2．2．1 蔗糖及不同生长调节剂的配比 | 第43-46页 |
| 1．2．2．2 不同的暗培养天数 | 第46页 |
| 1．2．2．3 不同的继代培养天数 | 第46-47页 |
| 2 结果与分析 | 第47-54页 |
| 2．1 蔗糖及不同生长调节剂配比的诱导效果 | 第47-53页 |
| 2．2 不同暗培养天数的诱导效果 | 第53-54页 |
| 2．3 不同继代天数对愈伤组织的影响效果 | 第54页 |
| 3 讨论 | 第54-57页 |
| 第四章 嘎拉苹果愈伤组织遗传变异的检测 | 第57-82页 |
| 1 材料与方法 | 第57-67页 |
| 1．1 材料 | 第57-60页 |
| 1．1．1 植物材料 | 第57页 |
| 1．1．2 酶等药品、引物及设备 | 第57-60页 |
| 1．2 方法 | 第60-67页 |
| 1．2．1 愈伤组织基因组DNA的提取及检测 | 第60-61页 |
| 1．2．1．1 提取 | 第60页 |
| 1．2．1．2 检测 | 第60-61页 |
| 1．2．2 SSR引物的筛选 | 第61页 |
| 1．2．3 SSR-PCR反应体系确定的正交实验 | 第61-63页 |
| 1．2．4 愈伤组织遗传变异的鉴定 | 第63-67页 |
| 1．2．4．1 不同处理相同继代时间之间的差异 | 第63-64页 |
| 1．2．4．2 相同处理不同继代时间之间的差异 | 第64-65页 |
| 1．2 4．3 蔗糖、不同生长调节剂浓度分别相同时的差异 | 第65-67页 |
| 2 结果与分析 | 第67-80页 |
| 2．1 愈伤组织DNA提取及检测结果 | 第67-68页 |
| 2．2 SSR引物的筛选结果 | 第68-69页 |
| 2．3 SSR-PCR反应体系的获得 | 第69-70页 |
| 2．4 愈伤组织遗传变异鉴定的结果 | 第70-80页 |
| 2．4．1 不同处理相同继代时间之间差异的鉴定 | 第71-73页 |
| 2．4．2 相同处理不同继代时间之间差异的鉴定 | 第73-75页 |
| 2．4．3 蔗糖、不同生长调节剂浓度分别相同时差异的鉴定 | 第75-80页 |
| 3 讨论 | 第80-82页 |
| 参考文献 | 第82-92页 |
| 致谢 | 第92页 |
