| 摘要 | 第4-5页 |
| Abstract | 第5页 |
| 第一章 绪论 | 第14-27页 |
| 1.1 甘氨酸概述 | 第14-20页 |
| 1.1.1 甘氨酸简介 | 第14页 |
| 1.1.2 甘氨酸体内合成途径 | 第14-15页 |
| 1.1.3 甘氨酸的降解途径 | 第15-16页 |
| 1.1.4 甘氨酸的生理功能 | 第16-17页 |
| 1.1.5 甘氨酸与其他疾病关系 | 第17-18页 |
| 1.1.6 甘氨酸与肿瘤的关系 | 第18-20页 |
| 1.2 甘氨酸脱羧酶概述 | 第20-21页 |
| 1.2.1 GLDC简介 | 第20页 |
| 1.2.2 GLDC功能及相关疾病 | 第20-21页 |
| 1.2.3 与GLDC相关基因 | 第21页 |
| 1.2.4 在植物中的作用 | 第21页 |
| 1.3 代谢组学概述 | 第21-24页 |
| 1.3.1 代谢组学研究对象 | 第22页 |
| 1.3.2 用于研究细胞代谢组学的方法 | 第22-23页 |
| 1.3.3 代谢组学的数据处理 | 第23-24页 |
| 1.4 研究目的及内容 | 第24-27页 |
| 1.4.1 研究目的 | 第24-25页 |
| 1.4.2 研究内容 | 第25-27页 |
| 第二章 癌细胞中甘氨酸代谢物的初步研究 | 第27-48页 |
| 2.1 实验材料 | 第27-28页 |
| 2.1.1 细胞系 | 第27页 |
| 2.1.2 实验试剂 | 第27页 |
| 2.1.3 主要实验仪器 | 第27-28页 |
| 2.2 实验方法 | 第28-30页 |
| 2.2.1 溶液的配制 | 第28页 |
| 2.2.2 细胞代谢样品的制备 | 第28-29页 |
| 2.2.3 LC-MS检测 | 第29-30页 |
| 2.2.4 数据处理 | 第30页 |
| 2.3 实验结果 | 第30-46页 |
| 2.3.1 甘氨酸代谢物组的采集 | 第30-33页 |
| 2.3.2 甘氨酸代谢物组的鉴定 | 第33-44页 |
| 2.3.3 模式识别分析 | 第44-46页 |
| 2.4 小结 | 第46-48页 |
| 第三章 不同抗癌机制药物对A549肿瘤细胞甘氨酸代谢物的影响 | 第48-66页 |
| 3.1 | 第49-50页 |
| 3.1.1 细胞系 | 第49页 |
| 3.1.2 实验试剂 | 第49页 |
| 3.1.3 主要实验仪器 | 第49-50页 |
| 3.2 实验方法 | 第50-53页 |
| 3.2.1 MTT法检测7种药物对A549细胞增殖的影响 | 第50-51页 |
| 3.2.2 样品的制备 | 第51-52页 |
| 3.2.3 LC-MS检测 | 第52页 |
| 3.2.4 数据处理 | 第52-53页 |
| 3.3 实验结果 | 第53-65页 |
| 3.3.1 MTT法检测7种药物对A549细胞增殖的影响 | 第53页 |
| 3.3.2 模式识别分析 | 第53-61页 |
| 3.3.3 差异代谢物的筛选 | 第61-62页 |
| 3.3.4 差异代谢物的通路及生物学意义 | 第62-64页 |
| 3.3.5 差异代谢物的聚类分析 | 第64-65页 |
| 3.4 小结 | 第65-66页 |
| 第四章 酪氨酸激酶抑制剂对A549细胞和H1299细胞甘氨酸代谢物的影响 | 第66-78页 |
| 4.1 实验材料 | 第67-68页 |
| 4.1.1 细胞系 | 第67页 |
| 4.1.2 实验试剂 | 第67页 |
| 4.1.3 主要实验仪器 | 第67-68页 |
| 4.2 实验方法 | 第68-70页 |
| 4.2.1 MTT法检测吉非替尼和阿法替尼对H299细胞增殖的影响 | 第68页 |
| 4.2.2 样品的制备 | 第68-70页 |
| 4.2.3 LC-MS检测 | 第70页 |
| 4.2.4 数据处理 | 第70页 |
| 4.3 实验结果 | 第70-76页 |
| 4.3.1 MTT法检测抗癌药物对H1299细胞增殖的影响 | 第70-71页 |
| 4.3.2 模式识别分析 | 第71-74页 |
| 4.3.3 差异代谢物的筛选 | 第74页 |
| 4.3.4 差异代谢物的通路及生物学意义 | 第74-76页 |
| 4.4 小结 | 第76-78页 |
| 第五章 伏立诺他(SAHA)和LP01对A549细胞和Hela细胞甘氨酸代谢物的影响 | 第78-90页 |
| 5.1 实验材料 | 第78-79页 |
| 5.1.1 细胞系 | 第78页 |
| 5.1.2 实验试剂 | 第78-79页 |
| 5.1.3 主要实验仪器 | 第79页 |
| 5.2 实验方法 | 第79-83页 |
| 5.2.1 MTT法检测SAHA和LP01对Hela细胞增殖的影响 | 第79-80页 |
| 5.2.2 样品的制备 | 第80-81页 |
| 5.2.3 LC-MS检测 | 第81-82页 |
| 5.2.4 数据处理 | 第82页 |
| 5.2.5 组蛋白去乙酰化酶抑制实验(Western Blot) | 第82-83页 |
| 5.3 实验结果 | 第83-89页 |
| 5.3.1 MTT法检测SAHA和LP01对Hela细胞增殖的影响 | 第83页 |
| 5.3.2 模式识别分析 | 第83-86页 |
| 5.3.3 差异代谢物的筛选 | 第86页 |
| 5.3.4 差异代谢物的通路的生物学意义 | 第86-87页 |
| 5.3.5 Western Blot结果 | 第87-89页 |
| 5.4 小结 | 第89-90页 |
| 第六章 总结与讨论 | 第90-93页 |
| 6.1 总结 | 第90-92页 |
| 6.2 讨论 | 第92-93页 |
| 附录一 甘氨酸代谢物信息库 | 第93-95页 |
| 附录二 部分甘氨酸代谢物的HCD-MS2图谱 | 第95-105页 |
| 参考文献 | 第105-110页 |
| 致谢 | 第110页 |
