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基于LC-MS研究肿瘤细胞的甘氨酸代谢组及其药物的干预作用

摘要第4-5页
Abstract第5页
第一章 绪论第14-27页
    1.1 甘氨酸概述第14-20页
        1.1.1 甘氨酸简介第14页
        1.1.2 甘氨酸体内合成途径第14-15页
        1.1.3 甘氨酸的降解途径第15-16页
        1.1.4 甘氨酸的生理功能第16-17页
        1.1.5 甘氨酸与其他疾病关系第17-18页
        1.1.6 甘氨酸与肿瘤的关系第18-20页
    1.2 甘氨酸脱羧酶概述第20-21页
        1.2.1 GLDC简介第20页
        1.2.2 GLDC功能及相关疾病第20-21页
        1.2.3 与GLDC相关基因第21页
        1.2.4 在植物中的作用第21页
    1.3 代谢组学概述第21-24页
        1.3.1 代谢组学研究对象第22页
        1.3.2 用于研究细胞代谢组学的方法第22-23页
        1.3.3 代谢组学的数据处理第23-24页
    1.4 研究目的及内容第24-27页
        1.4.1 研究目的第24-25页
        1.4.2 研究内容第25-27页
第二章 癌细胞中甘氨酸代谢物的初步研究第27-48页
    2.1 实验材料第27-28页
        2.1.1 细胞系第27页
        2.1.2 实验试剂第27页
        2.1.3 主要实验仪器第27-28页
    2.2 实验方法第28-30页
        2.2.1 溶液的配制第28页
        2.2.2 细胞代谢样品的制备第28-29页
        2.2.3 LC-MS检测第29-30页
        2.2.4 数据处理第30页
    2.3 实验结果第30-46页
        2.3.1 甘氨酸代谢物组的采集第30-33页
        2.3.2 甘氨酸代谢物组的鉴定第33-44页
        2.3.3 模式识别分析第44-46页
    2.4 小结第46-48页
第三章 不同抗癌机制药物对A549肿瘤细胞甘氨酸代谢物的影响第48-66页
    3.1第49-50页
        3.1.1 细胞系第49页
        3.1.2 实验试剂第49页
        3.1.3 主要实验仪器第49-50页
    3.2 实验方法第50-53页
        3.2.1 MTT法检测7种药物对A549细胞增殖的影响第50-51页
        3.2.2 样品的制备第51-52页
        3.2.3 LC-MS检测第52页
        3.2.4 数据处理第52-53页
    3.3 实验结果第53-65页
        3.3.1 MTT法检测7种药物对A549细胞增殖的影响第53页
        3.3.2 模式识别分析第53-61页
        3.3.3 差异代谢物的筛选第61-62页
        3.3.4 差异代谢物的通路及生物学意义第62-64页
        3.3.5 差异代谢物的聚类分析第64-65页
    3.4 小结第65-66页
第四章 酪氨酸激酶抑制剂对A549细胞和H1299细胞甘氨酸代谢物的影响第66-78页
    4.1 实验材料第67-68页
        4.1.1 细胞系第67页
        4.1.2 实验试剂第67页
        4.1.3 主要实验仪器第67-68页
    4.2 实验方法第68-70页
        4.2.1 MTT法检测吉非替尼和阿法替尼对H299细胞增殖的影响第68页
        4.2.2 样品的制备第68-70页
        4.2.3 LC-MS检测第70页
        4.2.4 数据处理第70页
    4.3 实验结果第70-76页
        4.3.1 MTT法检测抗癌药物对H1299细胞增殖的影响第70-71页
        4.3.2 模式识别分析第71-74页
        4.3.3 差异代谢物的筛选第74页
        4.3.4 差异代谢物的通路及生物学意义第74-76页
    4.4 小结第76-78页
第五章 伏立诺他(SAHA)和LP01对A549细胞和Hela细胞甘氨酸代谢物的影响第78-90页
    5.1 实验材料第78-79页
        5.1.1 细胞系第78页
        5.1.2 实验试剂第78-79页
        5.1.3 主要实验仪器第79页
    5.2 实验方法第79-83页
        5.2.1 MTT法检测SAHA和LP01对Hela细胞增殖的影响第79-80页
        5.2.2 样品的制备第80-81页
        5.2.3 LC-MS检测第81-82页
        5.2.4 数据处理第82页
        5.2.5 组蛋白去乙酰化酶抑制实验(Western Blot)第82-83页
    5.3 实验结果第83-89页
        5.3.1 MTT法检测SAHA和LP01对Hela细胞增殖的影响第83页
        5.3.2 模式识别分析第83-86页
        5.3.3 差异代谢物的筛选第86页
        5.3.4 差异代谢物的通路的生物学意义第86-87页
        5.3.5 Western Blot结果第87-89页
    5.4 小结第89-90页
第六章 总结与讨论第90-93页
    6.1 总结第90-92页
    6.2 讨论第92-93页
附录一 甘氨酸代谢物信息库第93-95页
附录二 部分甘氨酸代谢物的HCD-MS2图谱第95-105页
参考文献第105-110页
致谢第110页

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