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植物源性组织工程角膜上皮载体的开发与应用研究

中文摘要第4-5页
Abstract第5-6页
第一章 前言第13-25页
    1.1 角膜缘干细胞及其缺乏第13-16页
        1.1.1 角膜缘干细胞第13-14页
        1.1.2 角膜缘干细胞缺乏第14-15页
        1.1.3 角膜缘干细胞缺乏的治疗第15-16页
    1.2 组织工程的概述第16-17页
        1.2.1 组织工程概述第16页
        1.2.2 组织工程材料第16页
        1.2.3 组织工程的临床应用第16-17页
    1.3 组织工程角膜第17-22页
        1.3.1 组织工程角膜第17页
        1.3.2 组织工程角膜的种子细胞第17-18页
        1.3.3 组织工程角膜的支架材料第18-22页
    1.4 洋葱表皮第22-23页
    1.5 研究意义第23-25页
第二章 实验材料与方法第25-38页
    2.1 实验材料第25-29页
        2.1.1 仪器与设备第25-26页
        2.1.2 主要试剂第26-27页
        2.1.3 抗体第27页
        2.1.4 实验动物第27页
        2.1.5 试剂配制第27-28页
        2.1.6 培养基配制第28-29页
    2.2 实验方法第29-37页
        2.2.1 293T细胞复苏第29页
        2.2.2 293T细胞冻存第29页
        2.2.3 3T3、HCE、HUVCE、TKE2的复苏与冻存第29-30页
        2.2.4 293T和3T3的细胞培养第30页
        2.2.5 HCE和HUVEC的细胞培养第30页
        2.2.6 TKE2细胞的培养第30-31页
        2.2.7 细胞的计数第31页
        2.2.8 兔角膜细胞的取材和消化第31页
        2.2.9 兔角膜上皮片分离与单细胞的消化第31-32页
        2.2.10 兔角膜上皮细胞在OEM上空气暴露培养第32页
        2.2.11 原代兔角膜基质细胞培养第32-33页
        2.2.12 苏木素-伊红染色第33页
        2.2.13 角膜上皮细胞免疫荧光染色第33-34页
        2.2.14 冰冻切片的制备第34页
        2.2.15 组织工程角膜上皮免疫荧光染色第34-35页
        2.2.16 扫描电镜第35-36页
        2.2.17 透射电镜第36页
        2.2.18 OEM的分离与制备第36-37页
    2.3 主要软件第37-38页
第三章 结果与分析第38-51页
    3.1 材料的制备与观察第38-43页
        3.1.1 OEM的分离与制作过程第38页
        3.1.2 OEM的透明度观察第38-39页
        3.1.3 OEM的表面微观形态第39-40页
        3.1.4 OEM的超微结构第40-41页
        3.1.5 以OEM为载体细胞系和原代细胞的培养第41-43页
    3.2 组织工程角膜上皮的构建第43-51页
        3.2.1 以OEM为载体兔角膜上皮细胞培养过程观察第43-45页
        3.2.2 以OEM为载体兔角膜上皮细胞的超微形态第45-46页
        3.2.3 以OEM为载体兔角膜上皮细胞的增殖情况第46页
        3.2.4 以OEM为载体兔角膜上皮细胞连接蛋白的检测第46-47页
        3.2.5 以OEM为载体兔角膜上皮细胞分化蛋白的检测第47-48页
        3.2.6 以OEM为载体构建的组织工程角膜上皮第48-49页
        3.2.7 以OEM为载体组织工程角膜上皮连接蛋白和分化蛋白检测第49-51页
第四章 讨论第51-54页
    4.1 OEM载体的光学特性和超微结构第51页
    4.2 OEM载体对其他细胞的影响第51-52页
    4.3 以OEM为载体构建组织工程角膜上皮组织形态学分析第52页
    4.4 以OEM为载体体外培养的角膜上皮细胞的表型分析第52-53页
    4.5 以OEM为载体构建组织工程角膜上皮表型分析第53-54页
第五章 结论第54-55页
问题与展望第55-56页
参考文献第56-66页
缩略词索引第66-67页
致谢第67页

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