| 中文摘要 | 第3-6页 |
| Abstract | 第6-9页 |
| 缩写词 | 第10-17页 |
| 第一章 前言 | 第17-47页 |
| 1.1 植物内生菌的研究进展 | 第17-26页 |
| 1.1.1 内生菌的概念、分类、功能和现状 | 第17-24页 |
| 1.1.2 内生菌的分离 | 第24-25页 |
| 1.1.3 内生菌与宿主相互作用的分子机制 | 第25-26页 |
| 1.1.4 促进植物生长的微生物与可持续农业的关系 | 第26页 |
| 1.2 微生物对植物生长的促进作用 | 第26-30页 |
| 1.2.1 微生物的固氮作用 | 第27-28页 |
| 1.2.2 微生物的溶磷作用 | 第28页 |
| 1.2.3 微生物产植物生长调节物质 | 第28-29页 |
| 1.2.4 微生物产生的挥发性气体对植物生长的作用 | 第29-30页 |
| 1.2.5 微生物诱导植物提高非生物胁迫抗性 | 第30页 |
| 1.3 微生物调节植物根发育的研究进展 | 第30-45页 |
| 1.3.1 生长素在微生物调控根发育过程中的作用 | 第31-37页 |
| 1.3.2 细胞分裂素在微生物调控根发育过程中的作用 | 第37-42页 |
| 1.3.3 乙烯在微生物调控根发育过程中的作用 | 第42-45页 |
| 1.4 本文的研究目的和意义 | 第45-47页 |
| 第二章 拟南芥内生菌的分离鉴定及其对拟南芥生长的影响 | 第47-71页 |
| 2.1 引言 | 第47页 |
| 2.2 材料与方法 | 第47-51页 |
| 2.2.1 实验材料 | 第47页 |
| 2.2.2 培养条件 | 第47-48页 |
| 2.2.3 培养基配置和试剂配置 | 第48页 |
| 2.2.4 拟南芥内生菌的分离鉴定 | 第48-49页 |
| 2.2.5 内生菌对拟南芥幼苗生长的影响 | 第49页 |
| 2.2.6 拟南芥总叶面积、地上部分和地下部分的分析 | 第49页 |
| 2.2.7 可溶性总糖含量的测定 | 第49页 |
| 2.2.8 拟南芥内生菌LZR216代谢产物中植物激素的检测 | 第49-50页 |
| 2.2.9 拟南芥内生菌LZR216代谢产物中重要化合物的检测 | 第50-51页 |
| 2.2.10 数据分析及图像处理 | 第51页 |
| 2.3 实验结果 | 第51-68页 |
| 2.3.1 拟南芥内生菌的分离鉴定 | 第51页 |
| 2.3.2 内生菌对拟南芥幼苗生长的影响 | 第51-53页 |
| 2.3.3 不同内生菌互作对拟南芥幼苗生长的影响 | 第53-59页 |
| 2.3.4 内生菌对拟南芥幼苗可溶性糖积累的影响 | 第59-61页 |
| 2.3.5 LZR216代谢产物中化合物的检测 | 第61-68页 |
| 2.4 讨论与分析 | 第68-69页 |
| 2.5 本章小结 | 第69-71页 |
| 第三章 LZR216调节拟南芥根的发育依赖生长素信号和极性运输 | 第71-90页 |
| 3.1 引言 | 第71-72页 |
| 3.2 材料与方法 | 第72-74页 |
| 3.2.1 实验材料 | 第72页 |
| 3.2.2 培养条件 | 第72页 |
| 3.2.3 拟南芥幼苗与LZR216共培养 | 第72页 |
| 3.2.4 组织化学染色 | 第72-73页 |
| 3.2.5 FM4-64染色及显微分析 | 第73页 |
| 3.2.6 Confocal显微分析 | 第73页 |
| 3.2.7 拟南芥根中总RNA的提取 | 第73页 |
| 3.2.8 实时荧光定量PCR分析 | 第73-74页 |
| 3.2.9 数据分析及图像处理 | 第74页 |
| 3.2.10 实验所用引物序列 | 第74页 |
| 3.3 实验结果 | 第74-86页 |
| 3.3.1 LZR216影响拟南芥根的发育 | 第74页 |
| 3.3.2 LZR216负调节根尖细胞的分裂 | 第74-75页 |
| 3.3.3 LZR216促进拟南芥根毛的形成 | 第75-76页 |
| 3.3.4 LZR216增强了生长素响应基因的表达 | 第76-79页 |
| 3.3.5 LZR216调控拟南芥根的发育涉及生长素信号 | 第79-81页 |
| 3.3.6 LZR216调控拟南芥根的生长发育涉及生长素极性运输 | 第81页 |
| 3.3.7 LZR216影响了PIN基因的转录和PIN蛋白的丰度 | 第81-84页 |
| 3.3.8 NAA在LZR216抑制主根伸长过程中的作用 | 第84-86页 |
| 3.4 讨论与分析 | 第86-89页 |
| 3.5 本章小结 | 第89-90页 |
| 第四章 LZR216影响拟南芥的生长涉及了细胞分裂素信号 | 第90-106页 |
| 4.1 引言 | 第90-91页 |
| 4.2 材料与方法 | 第91-92页 |
| 4.2.1 实验材料 | 第91页 |
| 4.2.2 培养条件 | 第91页 |
| 4.2.3 材料处理 | 第91页 |
| 4.2.4 拟南芥根的形态分析及叶面积分析 | 第91页 |
| 4.2.5 组织化学染色 | 第91页 |
| 4.2.6 拟南芥根中总RNA的提取 | 第91页 |
| 4.2.7 实时荧光定量PCR分析 | 第91-92页 |
| 4.2.8 数据分析及图像处理 | 第92页 |
| 4.2.9 实验所用引物序列 | 第92页 |
| 4.3 实验结果 | 第92-102页 |
| 4.3.1 6-BA在LZR216影响拟南芥生长发育过程中的作用 | 第92页 |
| 4.3.2 细胞分裂素受体在LZR216影响拟南芥生长过程中的作用 | 第92-93页 |
| 4.3.3 AHP家族在LZR216影响拟南芥生长过程中的作用 | 第93-97页 |
| 4.3.4 ARR家族在LZR216影响拟南芥生长过程中的作用 | 第97-101页 |
| 4.3.5 LZR216调节细胞分裂素信号基因的转录 | 第101-102页 |
| 4.4 讨论与分析 | 第102-105页 |
| 4.5 本章小结 | 第105-106页 |
| 第五章 LZR216影响拟南芥的生长涉及了乙烯信号 | 第106-121页 |
| 5.1 引言 | 第106-107页 |
| 5.2 材料与方法 | 第107-108页 |
| 5.2.1 实验材料 | 第107页 |
| 5.2.2 培养条件 | 第107页 |
| 5.2.3 材料处理 | 第107页 |
| 5.2.4 拟南芥根的形态分析及叶面积分析 | 第107页 |
| 5.2.5 拟南芥根中总RNA的提取 | 第107-108页 |
| 5.2.6 实时荧光定量PCR分析 | 第108页 |
| 5.2.7 数据分析及图像处理 | 第108页 |
| 5.2.8 实验所用引物序列 | 第108页 |
| 5.3 实验结果 | 第108-117页 |
| 5.3.1 乙烯在LZR216影响拟南芥生长过程中的作用 | 第108-109页 |
| 5.3.2 乙烯受体在LZR216影响拟南芥生长过程中的作用 | 第109-112页 |
| 5.3.3 乙烯信号元件在LZR216影响拟南芥生长过程中的作用 | 第112-117页 |
| 5.3.4 LZR216对EIN3-OX转基因幼苗生长的影响 | 第117页 |
| 5.3.5 LZR216改变了乙烯合成和乙烯信号基因的表达 | 第117页 |
| 5.4 讨论与分析 | 第117-120页 |
| 5.5 本章小结 | 第120-121页 |
| 第六章 LZR216、生长素和乙烯共同调控拟南芥根的发育 | 第121-129页 |
| 6.1 引言 | 第121页 |
| 6.2 材料与方法 | 第121-122页 |
| 6.2.1 实验材料 | 第121-122页 |
| 6.2.2 培养条件 | 第122页 |
| 6.2.3 材料处理 | 第122页 |
| 6.2.4 拟南芥根的形态分析 | 第122页 |
| 6.2.5 组织化学染色 | 第122页 |
| 6.2.6 Confocal显微分析 | 第122页 |
| 6.2.7 数据分析及图像处理 | 第122页 |
| 6.3 实验结果 | 第122-127页 |
| 6.3.1 LZR216抑制主根的过程中NPA在乙烯下游起作用 | 第122-124页 |
| 6.3.2 LZR216和乙烯共同影响DR5::GUS的表达 | 第124-125页 |
| 6.3.3 生长素的极性运输是LZR216和乙烯抑制主根伸长必需的 | 第125页 |
| 6.3.4 乙烯信号在LZR216和乙烯抑制主根伸长的过程中不是必需的 | 第125-126页 |
| 6.3.5 LZR216和乙烯以相反的方式调控PIN蛋白的丰度 | 第126-127页 |
| 6.4 讨论与分析 | 第127-128页 |
| 6.5 本章小结 | 第128-129页 |
| 第七章 结论与展望 | 第129-131页 |
| 7.1 主要结论 | 第129页 |
| 7.2 研究展望 | 第129-131页 |
| 参考文献 | 第131-157页 |
| 附录 | 第157-165页 |
| 在学期间的研究成果 | 第165-167页 |
| 一、发表论文 | 第165-166页 |
| 二、参与课题 | 第166-167页 |
| 致谢 | 第167-168页 |
