中文摘要 | 第4-7页 |
Abstract | 第7-10页 |
缩略语表 | 第14-16页 |
前言 | 第16-19页 |
研究现状、成果 | 第16-17页 |
研究目的、方法 | 第17-19页 |
一、大鼠在体心肌I/R模型的建立及MVs的分离与提取 | 第19-37页 |
1.1 对象和方法 | 第19-26页 |
1.1.1 实验动物 | 第19页 |
1.1.2 主要仪器 | 第19页 |
1.1.3 试剂和药品 | 第19-20页 |
1.1.4 实验方法 | 第20-26页 |
1.2 结果 | 第26-32页 |
1.2.1 MAP | 第26-29页 |
1.2.2 HR | 第29页 |
1.2.3 ST-段 | 第29-30页 |
1.2.4 缺血期VA发生情况 | 第30页 |
1.2.5 TTC染色检测心肌梗死范围 | 第30页 |
1.2.6 MVs的分离提取 | 第30-31页 |
1.2.7 MVs的计数 | 第31-32页 |
1.3 讨论 | 第32-36页 |
1.3.1 大鼠在体心肌I/R模型的建立及评价 | 第32-33页 |
1.3.2 循环血中MVs的分离提取及保存 | 第33页 |
1.3.3 MVs的生成、生物学特性及生物信息传递功能 | 第33-35页 |
1.3.4 MVs在疾病发生发展中的作用 | 第35-36页 |
1.4 小结 | 第36-37页 |
二、心肌缺血大鼠MVs对I/R所致心肌组织损伤的作用 | 第37-56页 |
2.1 对象和方法 | 第37-42页 |
2.1.1 实验动物 | 第37页 |
2.1.2 主要仪器 | 第37页 |
2.1.3 试剂和药品 | 第37-38页 |
2.1.4 实验方法 | 第38-42页 |
2.2 结果 | 第42-53页 |
2.2.1 MVs的蛋白定量 | 第42页 |
2.2.2 MAP | 第42-43页 |
2.2.3 HR | 第43-47页 |
2.2.4 ST-段 | 第47页 |
2.2.5 缺血期VA发生情况 | 第47-48页 |
2.2.6 血清LDH活力 | 第48-49页 |
2.2.7 血清CK-MB活力 | 第49-50页 |
2.2.8 TTC染色检测心肌梗死范围 | 第50-52页 |
2.2.9 HE染色观察心肌组织形态学变化 | 第52-53页 |
2.3 讨论 | 第53-55页 |
2.3.1 I/R损伤发生机制 | 第53-54页 |
2.3.2 MVs与IHD的关系 | 第54页 |
2.3.3 心肌LAD缺血大鼠循环血中的MVs对心肌I/R损伤的影响 | 第54-55页 |
2.4 小结 | 第55-56页 |
三、心肌缺血大鼠MVs对I/R所致心肌细胞凋亡的影响 | 第56-84页 |
3.1 对象与方法 | 第56-67页 |
3.1.1 实验动物 | 第56页 |
3.1.2 主要仪器 | 第56-57页 |
3.1.3 试剂和药品 | 第57-58页 |
3.1.4 实验方法 | 第58-67页 |
3.2 结果 | 第67-74页 |
3.2.1 心肌组织caspase3、9及12活力 | 第67-69页 |
3.2.2 TUNEL染色观察心肌细胞凋亡 | 第69-70页 |
3.2.3 Westernblot检测心肌组织Bcl-2、Bax及GRP78蛋白表达情况 | 第70-72页 |
3.2.4 Westernblot心肌组织SERCA2、PLB及p-PLB蛋白表达情况 | 第72-74页 |
3.3 讨论 | 第74-82页 |
3.3.1 心肌细胞凋亡在I/R损伤中扮演的角色 | 第74-75页 |
3.3.2 MVs在细胞凋亡中扮演的角色 | 第75-77页 |
3.3.3 MVs对I/R损伤所致线粒体途径细胞凋亡的影响 | 第77-78页 |
3.3.4 MVs对I/R损伤所致内质网途径细胞凋亡的影响 | 第78-80页 |
3.3.5 MVs对心肌I/R损伤中凋亡调控信号Ca~(2+)的影响 | 第80-82页 |
3.4 小结 | 第82-84页 |
全文结论 | 第84-85页 |
论文创新点 | 第85-86页 |
参考文献 | 第86-102页 |
发表论文和参加科研情况说明 | 第102-103页 |
综述 细胞微囊泡在心血管疾病发生发展中的作用 | 第103-123页 |
综述参考文献 | 第115-123页 |
致谢 | 第123页 |