| 摘要 | 第7-9页 |
| ABSTRACT | 第9-11页 |
| 引言 | 第12-14页 |
| 第一章 何首乌肝毒性部位筛选研究 | 第14-29页 |
| 1 试验材料 | 第14-16页 |
| 1.1 试验细胞 | 第14页 |
| 1.2 试验动物 | 第14页 |
| 1.3 材料 | 第14页 |
| 1.4 试剂与药品 | 第14-15页 |
| 1.5 主要仪器 | 第15-16页 |
| 2 试验方法 | 第16-20页 |
| 2.1 何首乌不同提取部位药材的制备 | 第16页 |
| 2.2 何首乌不同提取部位药材体外肝毒性筛选 | 第16-19页 |
| 2.2.1 MTT 工作液配制 | 第16-17页 |
| 2.2.2 人正常肝脏L-02细胞的培养 | 第17页 |
| 2.2.3 细胞计数 | 第17页 |
| 2.2.4 细胞形态学观察 | 第17-18页 |
| 2.2.5 不同提取部位药材对LPS诱导L-02细胞毒性的影响 | 第18页 |
| 2.2.6 不同提取部位药材对LPS诱导L-02细胞凋亡的影响 | 第18页 |
| 2.2.7 不同提取部位药材对LPS诱导L-02细胞AST、ALT释放水平的影响 | 第18-19页 |
| 2.3 何首乌不同提取部位药材体内肝毒性筛选 | 第19页 |
| 2.3.1 动物分组与给药 | 第19页 |
| 2.3.2 不同提取部位药材对大鼠肝脏指数的影响 | 第19页 |
| 2.3.3 不同提取部位药材对大鼠血清ALT、AST、LDH的影响 | 第19页 |
| 2.3.4 肝脏病理学切片 | 第19页 |
| 2.4 统计学处理 | 第19-20页 |
| 3 结果 | 第20-27页 |
| 3.1 细胞形态观察 | 第20页 |
| 3.2 不同提取部位药材对LPS诱导L-02细胞毒性的影响 | 第20-21页 |
| 3.3 不同提取部位药材对LPS诱导L02细胞凋亡的影响 | 第21-22页 |
| 3.4 不同提取部位药材对LPS诱导L-02细胞AST、ALT释放水平的影响 | 第22-23页 |
| 3.5 不同提取部位药材对大鼠肝脏指数的影响 | 第23页 |
| 3.6 不同提取部位药材对大鼠血清ALT、AST、LDH的影响 | 第23-24页 |
| 3.7 肝脏病理学切片 | 第24-27页 |
| 4 讨论 | 第27-29页 |
| 第二章 何首乌肝毒性物质基础的验证 | 第29-43页 |
| 1 试验材料 | 第29-32页 |
| 1.1 试验细胞 | 第29页 |
| 1.2 试验动物 | 第29页 |
| 1.3 材料 | 第29页 |
| 1.4 试剂与药品 | 第29-31页 |
| 1.5 主要仪器 | 第31-32页 |
| 2 方法 | 第32-35页 |
| 2.1 二苯乙烯苷的富集 | 第32-34页 |
| 2.1.1 提取 | 第32页 |
| 2.1.2 分离 | 第32-34页 |
| 2.1.3 晶体结构解析 | 第34页 |
| 2.2 TSG单体体外细胞毒性验证 | 第34-35页 |
| 2.2.1 药物配置 | 第34页 |
| 2.2.2 细胞形态学观察 | 第34页 |
| 2.2.3 不同浓度TSG单体对LPS诱导L-02细胞毒性的影响 | 第34页 |
| 2.2.4 不同浓度TSG单体对LPS诱导L-02细胞凋亡的影响 | 第34页 |
| 2.2.5 不同浓度TSG单体对LPS诱导L-02细胞AST、ALT释放水平的影响 | 第34-35页 |
| 2.3 TSG单体体内肝毒性验证 | 第35页 |
| 2.3.1 动物分组与给药 | 第35页 |
| 2.3.2 不同浓度TSG单体对大鼠肝脏指数的影响 | 第35页 |
| 2.3.3 不同浓度TSG单体对大鼠血清ALT、AST、LDH的影响 | 第35页 |
| 2.3.4 肝脏病理学切片 | 第35页 |
| 2.4 统计学处理 | 第35页 |
| 3 结果 | 第35-41页 |
| 3.1 晶体验证 | 第35-36页 |
| 3.2 细胞形态观察 | 第36页 |
| 3.3 不同浓度TSG单体对LPS诱导L-02细胞毒性的影响 | 第36-37页 |
| 3.4 不同浓度TSG单体对LPS诱导L02细胞凋亡的影响 | 第37页 |
| 3.5 不同浓度TSG单体对LPS诱导L-02细胞AST、ALT释放水平的影响 | 第37-38页 |
| 3.6 不同浓度TSG单体对大鼠肝脏指数的影响 | 第38-39页 |
| 3.7 不同浓度TSG单体对大鼠血清ALT、AST、LDH的影响 | 第39-40页 |
| 3.8 肝脏病理学切片 | 第40-41页 |
| 4 讨论 | 第41-43页 |
| 第三章 何首乌质量控制研究 | 第43-69页 |
| 1 试验材料 | 第43-45页 |
| 1.1 试剂与药品 | 第43页 |
| 1.2 主要仪器 | 第43-44页 |
| 1.3 材料 | 第44-45页 |
| 2 方法 | 第45-58页 |
| 2.1 不同产地何首乌50%乙醇部位指纹图谱研究 | 第45-52页 |
| 2.1.1 样品前处理 | 第45页 |
| 2.1.2 色谱条件 | 第45-47页 |
| 2.1.3 对照品溶液的制备 | 第47页 |
| 2.1.4 供试品溶液的制备 | 第47页 |
| 2.1.5 线性关系考察 | 第47-48页 |
| 2.1.6 方法学考察 | 第48-52页 |
| 2.1.7 TSG含量测定 | 第52页 |
| 2.1.8 何首乌指纹图谱相似度评价 | 第52页 |
| 2.2 不同产地何首乌95%乙醇部位指纹图谱研究 | 第52-58页 |
| 2.2.1 样品的前处理 | 第52页 |
| 2.2.2 色谱条件 | 第52-54页 |
| 2.2.3 对照品溶液的制备 | 第54页 |
| 2.2.4 供试品溶液的制备 | 第54页 |
| 2.2.5 线性关系考察 | 第54-55页 |
| 2.2.6 方法学考察 | 第55-58页 |
| 2.2.7 大黄素和大黄素甲醚含量测定 | 第58页 |
| 2.2.8 何首乌指纹图谱相似度评价 | 第58页 |
| 3 结果 | 第58-67页 |
| 3.1 不同产地何首乌50%乙醇部位指纹图谱研究 | 第58-62页 |
| 3.1.1 含量测定 | 第58-59页 |
| 3.1.2 参照峰的选择 | 第59页 |
| 3.1.3 指纹图谱的建立及共有峰的标定 | 第59-60页 |
| 3.1.4 相似度计算 | 第60-61页 |
| 3.1.5 聚类分析 | 第61页 |
| 3.1.6 主成分分析 | 第61-62页 |
| 3.2 不同产地何首乌95%乙醇部位指纹图谱研究 | 第62-67页 |
| 3.2.1 含量测定 | 第62-63页 |
| 3.2.2 参照峰的选择 | 第63页 |
| 3.2.3 指纹图谱的建立及共有峰的标定 | 第63-64页 |
| 3.2.4 相似度计算 | 第64-65页 |
| 3.2.5 聚类分析 | 第65-66页 |
| 3.2.6 主成分分析 | 第66-67页 |
| 4 讨论 | 第67-69页 |
| 总结 | 第69页 |
| 工作展望与思考 | 第69-70页 |
| 参考文献 | 第70-72页 |
| 附录 | 第72-73页 |
| 综述 | 第73-95页 |
| 参考文献 | 第89-95页 |
| 致谢 | 第95页 |
