| 摘要 | 第3-6页 |
| ABSTRACT | 第6-9页 |
| 符号说明 | 第14-15页 |
| 第1章 绪论 | 第15-25页 |
| 1.1 多糖简介 | 第15页 |
| 1.2 多糖的免疫调节作用 | 第15-16页 |
| 1.3 多糖免疫调节作用的受体 | 第16-23页 |
| 1.3.1 Toll样受体（Toll-like receptors，TLRs） | 第17-19页 |
| 1.3.2 树突状细胞相关C型凝集素-1（Dendritic cell-associated C-typelectin-1，Dectin-1） | 第19-20页 |
| 1.3.3 甘露糖受体（Mannose receptor，MR） | 第20-21页 |
| 1.3.4 补体受体 3（Complement receptor 3，CR3） | 第21-22页 |
| 1.3.5 清道夫受体（Scavenger receptor，SR） | 第22-23页 |
| 1.4 本研究的目的、主要研究内容及创新性 | 第23-25页 |
| 1.4.1 研究目的 | 第23-24页 |
| 1.4.2 研究的主要内容 | 第24页 |
| 1.4.3 研究的创新性 | 第24-25页 |
| 第2章 PSG-1 对小鼠腹腔巨噬细胞MR的影响 | 第25-41页 |
| 2.1 引言 | 第25页 |
| 2.2 仪器及试剂 | 第25-28页 |
| 2.2.1 主要仪器 | 第25-26页 |
| 2.2.2 主要试剂 | 第26-27页 |
| 2.2.3 主要溶液配制 | 第27-28页 |
| 2.3 材料及动物 | 第28页 |
| 2.3.1 实验材料 | 第28页 |
| 2.3.2 实验动物 | 第28页 |
| 2.4 实验方法 | 第28-32页 |
| 2.4.1 小鼠腹腔巨噬细胞的制备 | 第28-29页 |
| 2.4.2 流式细胞仪检测小鼠腹腔巨噬细胞表面MR的表达 | 第29页 |
| 2.4.3 RT-PCR检测小鼠腹腔巨噬细胞MR m RNA表达水平 | 第29-31页 |
| 2.4.4 FITC-dextran测定小鼠腹腔巨噬细胞吞噬功能 | 第31页 |
| 2.4.5 ELISA法测定小鼠腹腔巨噬细胞上清液TNF-α 和IL-1β 的含量 | 第31页 |
| 2.4.6 RT-PCR检测小鼠腹腔巨噬细胞TNF-α 和IL-1β mRNA表达水平 | 第31-32页 |
| 2.4.7 统计学分析 | 第32页 |
| 2.5 实验结果 | 第32-38页 |
| 2.5.1 PSG-1 对小鼠腹腔巨噬细胞表面MR表达的影响 | 第32-34页 |
| 2.5.2 PSG-1 对小鼠腹腔巨噬细胞MR的mRNA表达水平的影响 | 第34页 |
| 2.5.3 MR抑制剂对PSG-1 诱导的小鼠腹腔巨噬细胞吞噬功能的影响 | 第34-36页 |
| 2.5.4 MR抑制剂对PSG-1 诱导的小鼠腹腔巨噬细胞TNF-α、IL-1β 分泌的影响 | 第36-37页 |
| 2.5.5 MR抑制剂对PSG-1 诱导的小鼠腹腔巨噬细胞TNF-α、IL-1βmRNA的表达水平的影响 | 第37-38页 |
| 2.6 讨论 | 第38-40页 |
| 2.7 本章小结 | 第40-41页 |
| 第3章 PSG-1 对LPS刺激的小鼠腹腔巨噬细胞MR的 影响 | 第41-57页 |
| 3.1 引言 | 第41-42页 |
| 3.2 仪器及试剂 | 第42-44页 |
| 3.2.1 主要仪器 | 第42-43页 |
| 3.2.2 主要试剂 | 第43页 |
| 3.2.3 主要溶液配制 | 第43-44页 |
| 3.3 实验方法 | 第44-47页 |
| 3.3.1 流式细胞仪检测LPS刺激的小鼠腹腔巨噬细胞表面MR的表达30 | 第44页 |
| 3.3.2 RT-PCR检测LPS刺激的小鼠腹腔巨噬细胞MR mRNA的表达水平 | 第44-45页 |
| 3.3.3 中性红实验检测抗MR抗体处理后LPS刺激的小鼠腹腔巨噬细胞吞噬活性 | 第45页 |
| 3.3.4 ELISA法测定抗MR抗体处理后LPS刺激的小鼠腹腔巨噬细胞TNF-α、IL-1β 和IL-10的含量 | 第45-46页 |
| 3.3.5 RT-PCR检测抗MR抗体处理后LPS刺激的小鼠腹腔巨噬细胞TNF-α、IL-1β 和IL-10 mRNA表达水平 | 第46页 |
| 3.3.6 统计学分析 | 第46-47页 |
| 3.4 实验结果 | 第47-54页 |
| 3.4.1 PSG-1 对LPS刺激的小鼠腹腔巨噬细胞表面MR表达的影响 | 第47-48页 |
| 3.4.2 PSG-1 对LPS刺激的小鼠腹腔巨噬细胞MR的mRNA表达水平的影响 | 第48-49页 |
| 3.4.3 抗MR抗体影响PSG-1 对LPS刺激的小鼠腹腔巨噬细胞的吞噬功能 | 第49-50页 |
| 3.4.4 抗MR抗体影响PSG-1 对LPS刺激的小鼠腹腔巨噬细胞分泌TNF-α、IL-1β、IL-10的功能 | 第50-52页 |
| 3.4.5 抗MR抗体影响PSG-1 对LPS刺激的小鼠腹腔巨噬细胞TNF-α、IL-1β、IL-10 mRNA的表达 | 第52-54页 |
| 3.5 讨论 | 第54-56页 |
| 3.6 本章小结 | 第56-57页 |
| 第4章 PSG-1 对LPS刺激的小鼠腹腔巨噬细胞TLR2和TLR4的影响及其与MR的关系 | 第57-76页 |
| 4.1 引言 | 第57-58页 |
| 4.2 仪器及试剂 | 第58-61页 |
| 4.2.1 主要仪器 | 第58页 |
| 4.2.2 主要试剂 | 第58-60页 |
| 4.2.3 主要溶液配制 | 第60-61页 |
| 4.3 实验方法 | 第61-65页 |
| 4.3.1 Western blot检测LPS刺激的小鼠腹腔巨噬细胞TLR2和TLR4蛋白的表达 | 第61-63页 |
| 4.3.2 RT-PCR检测LPS刺激的小鼠腹腔巨噬细胞TLR2和TLR4mRNA表达水平 | 第63-64页 |
| 4.3.3 Western blot检测抗MR抗体处理后LPS刺激的小鼠腹腔巨噬细胞TLR4、MyD88、NF-κBp65蛋白的表达及MAPKs的磷酸化水平 | 第64-65页 |
| 4.3.4 统计学分析 | 第65页 |
| 4.4 实验结果 | 第65-73页 |
| 4.4.1 PSG-1 对LPS刺激的小鼠腹腔巨噬细胞TLR2和TLR4表达的影响 | 第65-67页 |
| 4.4.2 PSG-1 对LPS刺激的小鼠腹腔巨噬细胞TLR2和TLR4 mRNA表达水平的影响 | 第67-69页 |
| 4.4.3 抗MR抗体影响PSG-1 对LPS刺激的小鼠腹腔巨噬细胞TLR4、MyD88、NF-κB p65蛋白的表达及MAPKs的磷酸化水平 | 第69-73页 |
| 4.5 讨论 | 第73-75页 |
| 4.6 本章小结 | 第75-76页 |
| 第5章 结论与展望 | 第76-78页 |
| 5.1 主要结论 | 第76-77页 |
| 5.2 进一步工作方向 | 第77-78页 |
| 致谢 | 第78-79页 |
| 参考文献 | 第79-91页 |
| 攻读学位期间的研究成果 | 第91页 |
