摘要 | 第4-6页 |
ABSTRACT | 第6-7页 |
符号说明 | 第14-16页 |
第一章 绪论 | 第16-26页 |
1.1 食品安全问题概述 | 第16-18页 |
1.2 我国食品安全问题频繁发生的主要原因 | 第18-19页 |
1.3 解决我国食品安全问题的重要措施 | 第19-20页 |
1.4 食品安全分析中常见的检测技术 | 第20-23页 |
1.4.1 气相色谱(GC)技术 | 第20-21页 |
1.4.2 高效液相色谱(HPLC)技术 | 第21页 |
1.4.3 质谱技术(MS) | 第21-22页 |
1.4.4 酶联免疫技术(ELISA) | 第22页 |
1.4.5 PCR技术 | 第22-23页 |
1.4.6 生物芯片技术 | 第23页 |
1.5 本文研究的内容 | 第23-26页 |
第二章 羧基聚苯乙烯微球包被蛋白的定量分析 | 第26-36页 |
2.1 引言 | 第26页 |
2.2 实验材料与方法 | 第26-30页 |
2.2.1 主要实验材料 | 第26页 |
2.2.2 主要实验仪器 | 第26-27页 |
2.2.3 实验原理 | 第27页 |
2.2.4 相关公式 | 第27-28页 |
2.2.5 实验步骤 | 第28-30页 |
2.3 结果与分析 | 第30-35页 |
2.3.1 微球溶液成像状态分析 | 第30页 |
2.3.2 微球固定BSA的图谱分析 | 第30-31页 |
2.3.3 一个微球固定的BSA量 | 第31页 |
2.3.4 最初添加的蛋白量对微球固定蛋白的影响 | 第31-32页 |
2.3.5 反应时间对微球固定蛋白的影响 | 第32-33页 |
2.3.6 偶联剂对微球包被蛋白率的影响 | 第33-34页 |
2.3.7 聚苯乙烯微球所包被的抗原抗体量 | 第34-35页 |
2.4 本章小结 | 第35-36页 |
第三章 微流体免疫技术应用于动物源性食品中盐酸克伦特罗的分析检测 | 第36-48页 |
3.1 引言 | 第36页 |
3.2 实验材料与方法 | 第36-40页 |
3.2.1 主要实验材料与仪器 | 第36页 |
3.2.2 实验方法 | 第36-40页 |
3.3 结果分析 | 第40-46页 |
3.3.1 微球包被BSA偶联的盐酸克伦特罗半抗原 | 第40-41页 |
3.3.2 盐酸克伦特罗抗体稀释比例 | 第41-42页 |
3.3.3 辣根过氧化酶标记的鼠抗体的稀释比例 | 第42-43页 |
3.3.4 盐酸克伦特罗抗体和辣根过氧化酶标记的鼠抗体的进样体积配比 | 第43页 |
3.3.5 微流体免疫抑制率实验分析 | 第43-44页 |
3.3.6 盐酸克伦特罗标准曲线及其检测限 | 第44-45页 |
3.3.7 盐酸克伦特罗抗体特异性实验 | 第45-46页 |
3.4 本章小结 | 第46-48页 |
第四章 微流体免疫-化学发光技术应用于猪尿样品中莱克多巴胺的分析检测 | 第48-58页 |
4.1 引言 | 第48页 |
4.2 实验材料与方法 | 第48-52页 |
4.2.1 主要实验材料与仪器 | 第48-49页 |
4.2.2 实验方法 | 第49-52页 |
4.3 结果与分析 | 第52-57页 |
4.3.1 微流体免疫-化学发光系统检测可行性评估 | 第52页 |
4.3.2 微球表面包被BSA偶联的莱克多巴胺半抗原的确证分析 | 第52-53页 |
4.3.3 莱克多巴胺抗体的稀释比例 | 第53页 |
4.3.4 底物流速 | 第53-54页 |
4.3.5 不同体积的兔抗体对底物的影响 | 第54-55页 |
4.3.6 莱克多巴胺标准曲线的绘制及其检测限的判定 | 第55-56页 |
4.3.7 猪尿样品中莱克多巴胺的标准曲线的绘制 | 第56页 |
4.3.8 猪尿样品中莱克多巴胺检测限和回收率的测定 | 第56-57页 |
4.4 本章小结 | 第57-58页 |
第五章 微流体免疫技术评估 | 第58-64页 |
5.1 酶联免疫分析沙丁胺醇的研究 | 第58-61页 |
5.1.1 主要实验材料与仪器 | 第58页 |
5.1.2 实验方法 | 第58-59页 |
5.1.3 结果与分析 | 第59-61页 |
5.2 讨论 | 第61-62页 |
5.3 本章小结 | 第62-64页 |
第六章 结论 | 第64-68页 |
参考文献 | 第68-72页 |
致谢 | 第72-74页 |
研究成果及发表的学术论文 | 第74-76页 |
作者和导师简介 | 第76-77页 |
附件 | 第77-78页 |