摘要 | 第7-8页 |
Abstract | 第8-9页 |
引言 | 第10-11页 |
文献综述 | 第11-22页 |
1 水稻的花器官结构和花发育过程 | 第11页 |
2 植物花器官发育模型研究进展 | 第11-14页 |
2.1 ABC模型 | 第11-12页 |
2.2 ABCD模型和ABCDE模型 | 第12-13页 |
2.3 四因子模型 | 第13-14页 |
2.4 花器官发育基因的表观修饰 | 第14页 |
3 水稻花器官发育的相关调控基因 | 第14-16页 |
3.1 MADS-box家族转录因子 | 第14-16页 |
3.2 其它家族转录因子 | 第16页 |
4 AGL6-clade基因在植物中的研究进展 | 第16-18页 |
4.1 AGL6-clade基因在单子叶植物中的研究进展 | 第17-18页 |
4.1.1 AGL6-clade基因在水稻中的研究进展 | 第17页 |
4.1.2 AGL6-clade基因在其他单子叶中的研究进展 | 第17-18页 |
4.2 AGL6-clade基因在双子叶植物中的研究进展 | 第18页 |
5 本文有关的实验技术 | 第18-20页 |
5.1 RNAi干扰 | 第19页 |
5.2 过量表达 | 第19-20页 |
5.3 转基因植株的GUS表达与RT-PCR | 第20页 |
6 本论文研究的目的与意义 | 第20-22页 |
材料与方法 | 第22-28页 |
1 实验材料 | 第22页 |
1.1 植物材料 | 第22页 |
1.2 常用分子生物学载体与试剂 | 第22页 |
2 实验方法 | 第22-28页 |
2.1 载体构建 | 第22-24页 |
2.1.1 pOsMADS17:GUS表达载体构建 | 第22-23页 |
2.1.2 RNA干扰表达载体pTCK303-OsMADS17的构建 | 第23页 |
2.1.3 Ubi-OsMADS17过量表达载体构建 | 第23-24页 |
2.1.4 半定量RT-PCR分析OsMADS17在转基因植株中的表达水平 | 第24页 |
2.2 农杆菌介导的水稻遗传转化 | 第24-26页 |
2.2.1 接种 | 第24-25页 |
2.2.2 掐芽 | 第25页 |
2.2.3 继代 | 第25页 |
2.2.4 共培养 | 第25-26页 |
2.2.5 抗性愈伤的继代筛选与再生植株检测 | 第26页 |
2.3 水稻遗传转化的培养基 | 第26-27页 |
2.4 本实验常用的其他实验方法(见附录3) | 第27-28页 |
结果与分析 | 第28-38页 |
1 pOsMADS17:GUS表达载体构建及遗传转化 | 第28-30页 |
1.1 pOsMADS17:GUS载体构建及遗传转化 | 第28-29页 |
1.2 GUS活性检测 | 第29-30页 |
2 OsMADS17的过量表达载体构建及遗传转化 | 第30-34页 |
2.1 Ubi:OsMADS17表达载体构建 | 第30-31页 |
2.2 过量载体转化野生型水稻 | 第31-34页 |
2.3 Ubi:OsMADS17转基因植株中OsMADS17的表达水平 | 第34页 |
3 OsMADS17的RNA干扰载体构建及遗传转化 | 第34-38页 |
3.1 pTCK-OsMADS17表达载体构建 | 第34-36页 |
3.2 pTCK-OsMADS17表达载体遗传转化野生型水稻 | 第36-37页 |
3.3 半定量RT-PCR分析OsMADS17在RNAi表达载体转基因植株中的表达水平 | 第37-38页 |
讨论 | 第38-40页 |
参考文献 | 第40-47页 |
附录 | 第47-58页 |
附录1 本实验所使用的载体PTCK303、pCAMBIA1391T、pCAMBIA1301载体的图谱 | 第47-48页 |
附录2 本实验所用到的PCR反应体系 | 第48-50页 |
附录3 本实验所用的其他实验方法 | 第50-54页 |
附录4 本实验所用基本培养基配方 | 第54-57页 |
附录5 GUS活性检测重要溶液 | 第57-58页 |
致谢 | 第58-59页 |