| 摘要 | 第1-6页 |
| ABSTRACT | 第6-8页 |
| 目录 | 第8-10页 |
| 1 引言 | 第10-12页 |
| 2 材料、仪器与方法 | 第12-24页 |
| ·仪器设备 | 第12-13页 |
| ·主要试剂 | 第13-14页 |
| ·常用试剂配制方法 | 第14-18页 |
| ·实验方法及操作步骤 | 第18-20页 |
| ·MTT 检测 TNF-α对 SMMC-7721 细胞增殖的变化 | 第18-19页 |
| ·SMS 酶活性测定 | 第19-20页 |
| ·Hoechst33258/PI 双染法观察活细胞状态 | 第20页 |
| ·细胞培养、RNA 干扰操作同上 | 第20页 |
| ·转染后 Hoechst/pI 双染 | 第20页 |
| ·Annexin V-FITC、PI 双染法检测细胞凋亡 | 第20页 |
| ·细胞培养、RNA 干扰操作同上 | 第20页 |
| ·流式细胞术 | 第20页 |
| ·Western blot 检测蛋白表达的变化 | 第20-22页 |
| ·细胞培养、RNA 干扰操作同上 | 第20页 |
| ·细胞蛋白的提取 | 第20页 |
| ·考马斯亮蓝 G250 测定细胞总蛋白 | 第20-21页 |
| ·蛋白质凝胶电泳 | 第21-22页 |
| ·蛋白质转印 | 第22页 |
| ·Western blot 检测 Caspase-8，Caspase-3 及β-actin 蛋白量 | 第22页 |
| ·血清测定 | 第22-23页 |
| ·患者血清来源 | 第22-23页 |
| ·血清 SM、PLTP 和 CETP 测定 | 第23页 |
| ·血糖检测 | 第23页 |
| ·SM 测定 | 第23页 |
| ·PLTP 测定 | 第23页 |
| ·CETP 测定 | 第23页 |
| ·PLTP 和 CETP 测定的标准品 | 第23页 |
| ·统计学处理 | 第23-24页 |
| 3 实验结果 | 第24-30页 |
| ·TNF-α对 SMMC-7721 细胞的抑制作用 | 第24页 |
| ·SMS 酶活性测定 | 第24页 |
| ·Hoechst 33258/PI 联合染色 SMMC-7721 活细胞观察 | 第24-25页 |
| ·FITC-annexin V/PI 双染法流式细胞仪检测结果 | 第25页 |
| ·Western-blot 检测蛋白表达量变化 | 第25页 |
| ·患者血清 SM、PLTP 及 CETP 等测定结果 | 第25-30页 |
| 4 讨论 | 第30-34页 |
| 5 参考文献 | 第34-38页 |
| 6 结论 | 第38-40页 |
| 7 附图及图版说明 | 第40-44页 |
| 文献综述 | 第44-56页 |
| 1. 前言 | 第44-45页 |
| 2. AS 的临床分期 | 第45-46页 |
| ·无症状隐匿期 | 第45页 |
| ·缺血期 | 第45页 |
| ·坏死期 | 第45-46页 |
| ·纤维化期 | 第46页 |
| 3. ⅡTDM 发病病因的理论分析 | 第46-47页 |
| ·与 I 型ⅡTDM 有关的因素 | 第46页 |
| ·与ⅡTDM 有关的因素 | 第46-47页 |
| ·与妊娠型ⅡTDM 相关的因素 | 第47页 |
| 4. SM、SMS 的概述 | 第47-48页 |
| 5. AS 与ⅡTDM 的关系 | 第48页 |
| 6. PLTP 在 AS 形成及ⅡTDM 中的作用 | 第48-49页 |
| 7. CETP 与 AS 的形成的关系 | 第49-50页 |
| 8. 总结和展望 | 第50-52页 |
| 参考文献 | 第52-56页 |
| 附录A 缩略语词汇表 | 第56-57页 |
| 附录B 攻读学位期间发表的论文 | 第57-58页 |
| 致谢 | 第58-59页 |
