目录 | 第8-14页 |
摘要 | 第14-16页 |
Abstract | 第16-18页 |
第一章 绪论 | 第19-28页 |
1 壳聚糖的来源及基本性质 | 第19-20页 |
2 壳聚糖及其衍生物的生理活性 | 第20页 |
3 壳聚糖及其衍生物在药剂学中的应用 | 第20-24页 |
3.1 药物载体材料 | 第20-23页 |
3.1.1 片剂 | 第21页 |
3.1.2 膜剂 | 第21页 |
3.1.3 凝胶 | 第21-22页 |
3.1.4 微球 | 第22页 |
3.1.5 纳米粒 | 第22页 |
3.1.6 高分子药物 | 第22-23页 |
3.2 吸收促进剂和增溶剂 | 第23-24页 |
3.3 酶抑制作用 | 第24页 |
4 维生素C的理化性质、生理功能与在医药领域的应用 | 第24-26页 |
4.1 VC的理化性质 | 第24-25页 |
4.2 VC的生理功能 | 第25页 |
4.3 VC在医药领域的应用 | 第25-26页 |
5 维生素C及其衍生物的研究进展 | 第26页 |
6 本论文的实验构想 | 第26-28页 |
第二章 壳聚糖维生素C复合物(CSVC)的制备与表征 | 第28-44页 |
1 试剂与仪器 | 第28页 |
2 壳聚糖脱乙酰度及黏均分子量的测定 | 第28-29页 |
3 间歇法制备高脱乙酰度(DD)壳聚糖 | 第29-30页 |
4 醋酸/H_2O_2复合溶剂法制取不同分子量壳聚糖 | 第30页 |
5 紫外分光光度法测定维生素C含量 | 第30-32页 |
5.1 测定波长的选择 | 第30-31页 |
5.2 标准曲线的制备 | 第31-32页 |
5.3 回收率测定 | 第32页 |
5.4 CSVC中VC的含量测定 | 第32页 |
6 CSVC的制备 | 第32-34页 |
7 CSVC的结构表征 | 第34-41页 |
7.1 差热分析(DSC) | 第34-36页 |
7.2 红外光谱(FTIR) | 第36-38页 |
7.3 核磁共振氢谱(~1H-NMR) | 第38-39页 |
7.4 X射线衍射 | 第39-41页 |
8 讨论 | 第41-43页 |
8.1 壳聚糖脱乙酰度及平均分子量的测定 | 第41页 |
8.2 壳聚糖的降解方法 | 第41-42页 |
8.3 CSVC的反应路线与条件 | 第42页 |
8.4 CSVC的结构表征 | 第42-43页 |
9 本章小结 | 第43-44页 |
第三章 CSVC的性质研究 | 第44-55页 |
1 试剂与仪器 | 第44页 |
2 溶解度测试 | 第44-45页 |
3 堆密度测试 | 第45页 |
4 稳定性影响因素试验 | 第45-47页 |
4.1 高温试验 | 第45页 |
4.2 高湿试验 | 第45-46页 |
4.3 光照试验 | 第46-47页 |
5 特性粘度测定 | 第47页 |
6 抗氧化率测定 | 第47-48页 |
7 大肠杆菌生长抑制测试 | 第48-49页 |
7.1 LB液体培养基的配制 | 第48页 |
7.2 大肠杆菌的培养 | 第48页 |
7.3 振荡烧瓶法测量菌液浊度 | 第48-49页 |
8 血清脂蛋白吸附测试 | 第49-50页 |
8.1 高脂乳剂配制 | 第49页 |
8.2 给药方法 | 第49页 |
8.3 样品制备与测试 | 第49-50页 |
9 溶血性试验 | 第50-52页 |
9.1 血细胞悬液的配制 | 第50页 |
9.2 供试品的制备 | 第50页 |
9.3 试验方法 | 第50-51页 |
9.4 结果判断 | 第51页 |
9.5 溶血性试验试验结果及结论 | 第51-52页 |
10 讨论 | 第52-53页 |
10.1 溶解度测试 | 第52页 |
10.2 抗氧化率测定 | 第52-53页 |
10.3 大肠杆菌生长抑制测试 | 第53页 |
10.4 血清脂蛋白吸附测试 | 第53页 |
11 本章小结 | 第53-55页 |
第四章 依托泊苷CSVC微球的制备 | 第55-71页 |
1 试剂与仪器 | 第55页 |
2 依托泊苷的性质与应用 | 第55-56页 |
3 依托泊苷分析方法的建立 | 第56-59页 |
3.1 最大吸收波长的确定 | 第56-57页 |
3.2 线性关系考察 | 第57页 |
3.3 精确度的测定 | 第57-58页 |
3.4 回收率的测定 | 第58-59页 |
4 依托泊苷CSVC微球的制备工艺及影响因素 | 第59-69页 |
4.1 微球的制备工艺 | 第59页 |
4.2 微球的粒径、形态及其分布 | 第59-60页 |
4.3 微球载药量及包封率的测定方法 | 第60页 |
4.4 微球制备的单因素考察 | 第60-64页 |
4.4.1 工艺因素的考察 | 第60-62页 |
4.4.2 处方因素的考察 | 第62-64页 |
4.5 微球制备工艺的优化 | 第64-66页 |
4.6 Eudragit L100包衣微球的制备 | 第66-69页 |
4.6.1 包衣液的配制 | 第66页 |
4.6.2 包衣工艺 | 第66-67页 |
4.6.3 包衣微球的载药量和包封率测定 | 第67页 |
4.6.4 包衣微球的体外释放度考察 | 第67-69页 |
5 讨论 | 第69-70页 |
6 本章小结 | 第70-71页 |
第五章 依托泊苷CSVC微球的体外抗肿瘤作用研究 | 第71-75页 |
1 试剂与仪器 | 第71页 |
2 药液配制 | 第71页 |
3 细胞培养 | 第71页 |
4 MTT测定 | 第71-72页 |
5 流式细胞仪分析 | 第72-73页 |
6 讨论 | 第73-74页 |
7 本章小结 | 第74-75页 |
第六章 紫杉醇CSVC纳米粒的制备 | 第75-89页 |
1 试剂与仪器 | 第75页 |
2 紫杉醇的性质与应用 | 第75-77页 |
3 紫杉醇分析方法的建立 | 第77-79页 |
3.1 检测波长的选择 | 第77页 |
3.2 标准曲线的绘制 | 第77-78页 |
3.3 系统适用性试验 | 第78页 |
3.4 专属性实验 | 第78页 |
3.5 回收率试验 | 第78-79页 |
3.6 精密度试验 | 第79页 |
4 紫杉醇CSVC纳米粒的制备及影响因素 | 第79-87页 |
4.1 紫杉醇CSVC纳米粒的制备工艺 | 第79-80页 |
4.2 纳米粒的粒径大小及分布检测 | 第80页 |
4.3 纳米粒形态透射电子显微镜观察 | 第80页 |
4.4 纳米粒的包封率及载药量测定 | 第80页 |
4.5 紫杉醇CSVC纳米粒制备工艺筛选 | 第80-82页 |
4.5.1 CSVC和三聚磷酸钠浓度的影响 | 第80-81页 |
4.5.2 CSVC和三聚磷酸钠质量比的影响 | 第81页 |
4.5.3 TPP滴加速度的影响 | 第81页 |
4.5.4 搅拌速度的影响 | 第81-82页 |
4.5.5 紫杉醇浓度对纳米粒包封率的影响 | 第82页 |
4.6 紫杉醇CSVC纳米粒制备工艺的确定 | 第82页 |
4.7 紫杉醇CSVC纳米粒的粒径及zeta电位测定 | 第82-84页 |
4.8 紫杉醇CSVC纳米粒的载药量和包封率测定 | 第84页 |
4.9 紫杉醇CSVC纳米粒的体外释放度测定 | 第84-85页 |
4.10 紫杉醇CSVC纳米粒的冻干研究 | 第85-87页 |
4.10.1 预冻速率的影响 | 第85页 |
4.10.2 预冻温度的影响 | 第85-86页 |
4.10.3 预冻时间的影响 | 第86页 |
4.10.4 单一冻干保护剂的筛选 | 第86-87页 |
4.10.5 复合冻干保护剂的筛选 | 第87页 |
5 本章小结 | 第87-89页 |
第七章 紫杉醇CSVC纳米粒对非小细胞肺癌细胞的抑制作用 | 第89-95页 |
1 试剂与仪器 | 第89页 |
2 细胞培养和药液配制 | 第89-90页 |
2.1 小鼠非小细胞肺癌细胞的培养 | 第89页 |
2.2 小鼠非小细胞肺癌细胞的冻存 | 第89-90页 |
2.3 药液配制 | 第90页 |
3 MTT法测定NSCLC细胞的死亡率 | 第90-91页 |
4 倒置显微镜观察NSCLC细胞的生长和形态 | 第91-92页 |
5 AO染色检测NSCLC细胞凋亡 | 第92-93页 |
7 本章小结 | 第93-95页 |
全文结论 | 第95-97页 |
参考文献 | 第97-103页 |
致谢 | 第103-104页 |
博士期间发表文章目录 | 第104-113页 |