摘要 | 第4-6页 |
Abstract | 第6-8页 |
第一章 绪论 | 第14-30页 |
1.1 电化学生物传感器概述 | 第14-17页 |
1.1.1 电化学生物传感器的工作原理 | 第14-15页 |
1.1.2 电化学生物传感器的构建 | 第15-16页 |
1.1.2.1 生物活性物质的固定方法 | 第15-16页 |
1.1.2.2 电化学生物传感器的构建方法 | 第16页 |
1.1.3 直接电化学酶传感器 | 第16-17页 |
1.2 多肽的合成、纯化及在电化学生物传感器中的应用 | 第17-19页 |
1.2.1 多肽化学合成法 | 第17-18页 |
1.2.1.1 多肽固相合成法 | 第17-18页 |
1.2.1.2 多肽液相合成法 | 第18页 |
1.2.2 多肽的分离纯化方法 | 第18-19页 |
1.2.3 多肽在电化学生物传感中的应用 | 第19页 |
1.3 多肽分子自组装 | 第19-21页 |
1.3.1 苯丙氨酸二肽类分子的自组装 | 第20页 |
1.3.2 苯丙氨酸二肽类分子自组装材料在电化学生物传感中的应用 | 第20-21页 |
1.4 石墨烯修饰电极在电化学传感中的应用 | 第21-26页 |
1.4.1 石墨烯简介 | 第22页 |
1.4.2 石墨烯的功能化 | 第22-23页 |
1.4.3 基于电化学还原氧化石墨烯的电化学传感研究 | 第23-26页 |
1.4.3.1 电化学还原氧化石墨烯修饰电极的制备 | 第23-24页 |
1.4.3.2 基于脉冲电位法构建的ErGO修饰电极 | 第24-26页 |
1.5 Langmuir-Blodgett膜 | 第26-28页 |
1.5.1 LB膜法简介 | 第26-27页 |
1.5.2 LB膜法构建电化学传感器的应用 | 第27-28页 |
1.6 论文选题及研究思路 | 第28-30页 |
第二章 苯丙氨酸二肽及其衍生物的合成、表征 | 第30-39页 |
2.1 引言 | 第30页 |
2.2 实验部分 | 第30-32页 |
2.2.1 实验试剂 | 第30-31页 |
2.2.2 实验仪器 | 第31页 |
2.2.3 FF及其衍生物的固相合成 | 第31-32页 |
2.2.4 二茂铁甲酸-FF(Fc-FF)的合成 | 第32页 |
2.3 结果与讨论 | 第32-37页 |
2.3.1 FF的RP-HPLC分析及质谱表征 | 第32-33页 |
2.3.2 FAF的RP-HPLC分析及质谱表征 | 第33页 |
2.3.3 FAAAF的RP-HPLC分析及质谱表征 | 第33-36页 |
2.3.4 FFA的RP-HPLC分析及质谱表征 | 第36页 |
2.3.5 FFAAA的RP-HPLC分析及质谱表征 | 第36-37页 |
2.3.6 Fc-FF的RP-HPLC分析及质谱表征 | 第37页 |
2.4 小结 | 第37-39页 |
第三章 苯丙氨酸二肽-石墨烯的自组装特性及其电化学生物传感应用 | 第39-63页 |
3.1 苯丙氨酸二肽及其衍生物-石墨烯自组装特性 | 第39-47页 |
3.1.1 引言 | 第39-40页 |
3.1.2 实验部分 | 第40-41页 |
3.1.2.1 仪器和试剂 | 第40页 |
3.1.2.2 石墨烯的制备 | 第40-41页 |
3.1.2.3 自组装薄膜的制备 | 第41页 |
3.1.2.4 修饰电极的制备 | 第41页 |
3.1.3 结果与讨论 | 第41-47页 |
3.1.3.1 石墨烯的制备和表征 | 第41-43页 |
3.1.3.2 FFNW-rGO复合薄膜的特性 | 第43-46页 |
3.1.3.3 FFNW-rGO复合薄膜形成机理的讨论 | 第46页 |
3.1.3.4 FFNW-rGO复合薄膜的电化学特性 | 第46-47页 |
3.1.4 小结 | 第47页 |
3.2 牛血红蛋白在FFNW-rGO复合薄膜上的直接电化学行为及其电分析应用 | 第47-63页 |
3.2.1 引言 | 第47-49页 |
3.2.2 实验部分 | 第49-50页 |
3.2.2.1 仪器和试剂 | 第49页 |
3.2.2.2 牛血红蛋白修饰电极的制备 | 第49-50页 |
3.2.3 结果与讨论 | 第50-62页 |
3.2.3.1 Nafion-Hb/FFNW-rGO修饰电极的电化学特性 | 第50-51页 |
3.2.3.2 Nafion-Hb/FFNW-rGO的形貌特性 | 第51-52页 |
3.2.3.3 Nafion-Hb/FFNW-rGO的紫外-可见吸收光谱分析 | 第52-53页 |
3.2.3.4 Nafion-Hb/FFNW-r GO/GCE的直接电化学行为 | 第53-56页 |
3.2.3.5 Nafion-Hb/FFNW-r GO/GCE对H_2O_2的电催化作用 | 第56-57页 |
3.2.3.6 Nafion-Hb/FFNW-r GO/GCE测定H_2O_2含量的方法建立 | 第57-61页 |
3.2.3.7 修饰电极的重现性、稳定性和干扰实验研究 | 第61页 |
3.2.3.8 试样中H2O2的分析测定 | 第61-62页 |
3.2.4 小结 | 第62-63页 |
第四章 基于脉冲电位法构建的苯丙氨酸二肽-石墨烯复合膜电化学传感研究 | 第63-99页 |
4.1 脉冲恒电位法构建石墨烯修饰电极及其应用 | 第63-76页 |
4.1.1 引言 | 第63-64页 |
4.1.2 实验部分 | 第64-65页 |
4.1.2.1 仪器和试剂 | 第64页 |
4.1.2.2 电化学沉积石墨烯修饰电极的制备 | 第64-65页 |
4.1.3 结果与讨论 | 第65-76页 |
4.1.3.1 电沉积石墨烯薄膜条件优化 | 第65-66页 |
4.1.3.2 电沉积石墨烯薄膜表面形貌 | 第66-67页 |
4.1.3.3 修饰电极的电化学特性 | 第67-68页 |
4.1.3.4 L-dopa在PPM-ErGO/GCE上的电化学行为 | 第68-72页 |
4.1.3.5 L-dopa在PPM-ErGO/GCE上的吸附量计算 | 第72页 |
4.1.3.6 L-dopa在PPM-ErGO/GCE上分析方法的建立 | 第72-75页 |
4.1.3.7 混合尿样中L-dopa的测定 | 第75-76页 |
4.1.4 小结 | 第76页 |
4.2 牛血红蛋白在脉冲电沉积苯丙氨酸二肽-石墨烯复合膜中的直接电化学行为及对硝基甲烷的分析 | 第76-86页 |
4.2.1 引言 | 第76-77页 |
4.2.2 实验部分 | 第77-78页 |
4.2.2.1 仪器和试剂 | 第77页 |
4.2.2.2 修饰电极的制备 | 第77-78页 |
4.2.3 结果与讨论 | 第78-86页 |
4.2.3.1 FF-ErGO薄膜特性 | 第78-80页 |
4.2.3.2 Cs-Hb/FF-ErGO复合薄膜的特性 | 第80-81页 |
4.2.3.3 Cs-Hb/FF-ErGO/GCE的直接电化学行为 | 第81-83页 |
4.2.3.4 Cs-Hb/FF-ErGO/GCE对CH_3NO_2的电催化作用 | 第83-84页 |
4.2.3.5 Cs-Hb/FF-ErGO/GCE测定CH_3NO_3含量的方法建立 | 第84-85页 |
4.2.3.6 Cs-Hb/FF-ErGO/GCE的稳定性、重现性和干扰实验 | 第85-86页 |
4.2.3.7 实际水样样品测定 | 第86页 |
4.2.4 小结 | 第86页 |
4.3 葡萄糖氧化酶嵌入石墨烯-苯丙氨酸二肽复合膜中的直接电化学行为及其电分析应用 | 第86-99页 |
4.3.1 引言 | 第86-87页 |
4.3.2 实验部分 | 第87-88页 |
4.3.2.1 仪器和试剂 | 第87页 |
4.3.2.2 修饰电极的制备 | 第87-88页 |
4.3.3 结果与讨论 | 第88-98页 |
4.3.3.1 GOD-FF-GO分散液的性质 | 第88-89页 |
4.3.3.2 GOD-FF-ErGO修饰电极的特性 | 第89-90页 |
4.3.3.3 GOD-FF-rGO/GCE的直接电化学行为 | 第90-93页 |
4.3.3.4 GOD-FF-ErGO电化学生物传感器对葡萄糖的测定 | 第93-96页 |
4.3.3.5 人工模拟血清中葡萄糖的检测 | 第96-98页 |
4.3.4 小结 | 第98-99页 |
第五章 基于多肽(FFAAA)-石墨烯LB膜构建的电化学生物传感器 | 第99-125页 |
5.1 多肽(FFAAA)-石墨烯LB膜的特性研究 | 第99-107页 |
5.1.1 引言 | 第99-100页 |
5.1.2 实验部分 | 第100-101页 |
5.1.2.1 仪器和试剂 | 第100页 |
5.1.2.2 表面压-面积(π-A)等温线测定 | 第100页 |
5.1.2.3 FFAAA-rGO复合LB膜修饰电极的制备 | 第100-101页 |
5.1.3 结果与讨论 | 第101-106页 |
5.1.3.1 多肽-石墨烯复合LB膜的 π-A等温线 | 第101-102页 |
5.1.3.2 FFAAA-rGO复合物的红外光谱表征 | 第102-103页 |
5.1.3.3 FFAAA-rGO复合LB膜的形貌表征 | 第103-105页 |
5.1.3.4 FFAAA-rGO复合LB膜修饰电极的电化学特性 | 第105-106页 |
5.1.4 小结 | 第106-107页 |
5.2 细胞色素c直接嵌入FFAAA-rGO复合LB膜中的直接电化学行为及其电分析作用 | 第107-116页 |
5.2.1 引言 | 第107-108页 |
5.2.2 实验部分 | 第108-109页 |
5.2.2.1 仪器和试剂 | 第108页 |
5.2.2.2 细胞色素c修饰电极的制备 | 第108-109页 |
5.2.3 结果与讨论 | 第109-116页 |
5.2.3.1 Cyt-FFAAA-rGO复合LB膜的 π-A等温线 | 第109-110页 |
5.2.3.2 Cyt-FFAAA-rGO复合LB膜的形貌表征 | 第110页 |
5.2.3.3 Cyt-FFAAA-rGO复合LB膜的电化学交流阻抗分析 | 第110-111页 |
5.2.3.4 Cyt-FFAAA-rGO复合LB膜的紫外-可见吸收光谱分析 | 第111页 |
5.2.3.5 Cs/Cyt-FFAAA-rGO/GCE的直接电化学行为 | 第111-113页 |
5.2.3.6 Cs/Cyt-FFAAA-rGO/GCE对H2O2的电催化作用 | 第113-114页 |
5.2.3.7 Cs/Cyt-FFAAA-rGO/GCE测定H2O2含量的方法建立 | 第114-115页 |
5.2.3.8 Cs/Cyt-FFAAA-rGO/GCE的稳定性和重现性实验研究 | 第115-116页 |
5.2.4 小结 | 第116页 |
5.3 基于多肽-石墨烯LB膜构建的醇溶蛋白电化学免疫传感器 | 第116-125页 |
5.3.1 引言 | 第116-117页 |
5.3.2 实验部分 | 第117-118页 |
5.3.2.1 仪器和试剂 | 第117页 |
5.3.2.2 电化学免疫传感器的制备 | 第117-118页 |
5.3.2.3 免疫检测过程 | 第118页 |
5.3.2.4 样品的制备 | 第118页 |
5.3.3 结果与讨论 | 第118-123页 |
5.3.3.1 Anti-gliadin/FFAAA-rGO/GCE传感器制备条件优化 | 第118-119页 |
5.3.3.2 Anti-gliadin/FFAAA-rGO/GCE传感器的电化学表征 | 第119-120页 |
5.3.3.3 Anti-gliadin/FFAAA-rGO/GCE传感器的培育时间优化 | 第120-121页 |
5.3.3.4 Anti-gliadin/FFAAA-rGO/GCE传感器用于醇溶蛋白的检测 | 第121-122页 |
5.3.3.5 Anti-gliadin/FFAAA-rGO/GCE传感器的特异性、稳定性、重现性 | 第122-123页 |
5.3.3.6 实际样品中醇溶蛋白的检测 | 第123页 |
5.3.4 小结 | 第123-125页 |
结论 | 第125-127页 |
参考文献 | 第127-141页 |
个人简历 | 第141-142页 |
博士期间论文发表情况 | 第142-143页 |
致谢 | 第143页 |