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通过氢键相互作用调控树形高分子的基因转染效率及其生物医学应用

内容摘要第6-9页
ABSTRACT第9-12页
第一章 绪论第17-57页
    1.1 基因治疗的意义与困难第17页
    1.2 病毒与非病毒基因载体的优缺点第17-19页
    1.3 树形高分子的结构特点第19-20页
    1.4 树形高分子作为基因载体的优势第20-21页
    1.5 表面功能化修饰的树形高分子作为基因载体第21-42页
        1.5.1 糖基化修饰第22-25页
        1.5.2 氨基酸修饰第25-28页
        1.5.3 阳离子分子修饰第28-31页
        1.5.4 脂质分子修饰第31-36页
        1.5.5 氟化修饰第36-38页
        1.5.6 多肽及蛋白修饰第38-39页
        1.5.7 高分子聚合物修饰第39-41页
        1.5.8 纳米材料修饰第41-42页
    1.6 氢键与生物材料第42-53页
        1.6.1 什么是氢键第42-43页
        1.6.2 超分子化学与氢键自组装第43-45页
        1.6.3 生物材料中的氢键白组装第45-50页
        1.6.4 氢键参与的基因运输系统第50-53页
    1.7 论文研究思路与研究内容第53-57页
第二章 树形高分子表面修饰氢键配体作为基因载体的制备和应用第57-91页
    2.1 引言第57-58页
    2.2 实验材料和方法第58-64页
        2.2.1 实验材料第58-59页
        2.2.2 合成DAT修饰的树形高分子第59页
        2.2.3 合成二甲氧基三嗪(DMT)和二氨基嘌呤(APu)修饰的树形高分子第59页
        2.2.4 合成DAT修饰的PAA和PPI第59页
        2.2.5 一维和二维核磁共振技术表征第59-60页
        2.2.6 茚三酮检测法第60页
        2.2.7 琼脂糖凝胶电泳第60页
        2.2.8 转染复合物的颗粒尺寸和zeta电势分析第60-61页
        2.2.9 细胞培养第61页
        2.2.10 体外基因转染第61-62页
        2.2.11 细胞毒性分析第62页
        2.2.12 溶血实验分析第62页
        2.2.13 细胞摄入分析第62-63页
        2.2.14 内涵体逃逸分析第63页
        2.2.15 细胞质核酸酶活性分析第63页
        2.2.16 血清抗性分析第63页
        2.2.17 制备多细胞球体第63-64页
        2.2.18 多细胞球体基因转染实验第64页
    2.3 结果与讨论第64-89页
        2.3.1 DAT修饰的PAMAM树形高分子的合成和表征第64-66页
        2.3.2 DMT和APu修饰的PAMAM树形高分子的合成和表征第66-67页
        2.3.3 DAT修饰的PPI和PAA第67页
        2.3.4 树形高分子降解分析第67-69页
        2.3.5 转染复合物尺寸和zeta电势分析第69-71页
        2.3.6 凝胶电泳实验第71-73页
        2.3.7 DAT修饰的G5 PAMAM树形高分子基因转染研究第73-77页
        2.3.8 DAT修饰的其他阳离子聚合物基因转染研究第77-79页
        2.3.9 细胞毒性实验第79-81页
        2.3.10 氢键调控基因转染机制第81-82页
        2.3.11 碱基修饰的树形高分子转染研究第82-83页
        2.3.12 氢键调控基因转染的其他机制第83-87页
        2.3.13 DAT修饰树形高分子中伯胺基团的作用研究第87-88页
        2.3.14 血清抗性研究第88页
        2.3.15 3D肿瘤细胞转染研究第88-89页
    2.4 本章小结第89-91页
第三章 二氨基三嗪修饰的PAMAM树形高分子基因载体运输MDM2 siRNA抑制PC-9肿瘤生长的应用第91-107页
    3.1 引言第91-93页
    3.2 实验材料和方法第93-98页
        3.2.1 实验材料第93页
        3.2.2 实验设备第93页
        3.2.3 合成DAT修饰的树形高分子第93页
        3.2.4 一维核磁共振技术表征第93页
        3.2.5 琼脂糖凝胶电泳第93-94页
        3.2.6 转染复合物的颗粒尺寸和zeta电势分析第94页
        3.2.7 细胞培养第94页
        3.2.8 皮下荷瘤实验第94页
        3.2.9 体外siRNA运输实验第94-95页
        3.2.10 体内siRNA运输实验第95页
        3.2.11 蛋白质免疫印迹实验第95-96页
        3.2.12 RNA抽提第96页
        3.2.13 Real-Time PCR第96-97页
        3.2.14 组织块石蜡包埋第97-98页
        3.2.15 组织免疫组化和组织HE染色第98页
    3.3 结果与讨论第98-106页
        3.3.1 DAT修饰的树形高分子的合成与表征第99页
        3.3.2 转染复合物尺寸和zeta电势分析第99-101页
        3.3.3 凝胶电泳实验第101页
        3.3.4 在细胞水平上干扰MDM2基因对PC-9细胞凋亡的影响第101-103页
        3.3.5 在动物水平上干扰MDM2基因抑制小鼠皮下PC-9肿瘤生长第103-106页
    3.4 本章小结第106-107页
第四章 一种超分子的方法提高低代数树形高分子的基因转染效率第107-133页
    4.1 引言第107-108页
    4.2 实验材料和方法第108-112页
        4.2.1 实验材料第108页
        4.2.2 合成DAT修饰的低代数树形高分子第108-109页
        4.2.3 合成二甲氧基三嗪(DMT)修饰的低代数树形高分子第109页
        4.2.4 一维和二维核磁共振技术表征第109页
        4.2.5 脉冲梯度场(PGSE)扩散核磁实验第109页
        4.2.6 转染复合物的形成第109-110页
        4.2.7 转染复合物的尺寸和zeta电势表征第110页
        4.2.8 溴化乙锭(EB)置换分析第110页
        4.2.9 琼脂糖凝胶电泳分析第110-111页
        4.2.10 细胞培养第111页
        4.2.11 体外基因转染实验第111页
        4.2.12 细胞毒性实验第111页
        4.2.13 细胞摄入实验第111-112页
        4.2.14 激光共聚焦显微镜实验(CLSM)第112页
    4.3 结果与讨论第112-131页
        4.3.1 DAT修饰的阳离子聚合物的合成与表征第112-114页
        4.3.2 DMT修饰的阳离子聚合物的合成与表征第114-115页
        4.3.3 CyA与G3-DAT_(13)之间的氢键自组装第115-117页
        4.3.4 转染复合物稳定性研究第117-121页
        4.3.5 体外基因转染实验第121-126页
        4.3.6 细胞毒性实验第126-128页
        4.3.7 细胞摄入实验第128-130页
        4.3.8 激光共聚焦实验第130-131页
    4.4 本章小结第131-133页
第五章 结论与展望第133-137页
参考文献第137-157页
攻读博士学位期间所取得的科研成果第157-159页
致谢第159-160页

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