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一种普鲁兰酶嵌合体及其在毕赤酵母中的高效表达

摘要第3-4页
Abstract第4-5页
第一章 绪论第9-16页
    1.1 巴斯德毕赤酵母表达系统第9-10页
        1.1.1 巴斯德毕赤酵母表达系统简介第9页
        1.1.2 影响外源基因高效表达的因素第9-10页
    1.2 普鲁兰酶的研究进展第10-13页
        1.2.1 普鲁兰酶生产菌株第11-12页
        1.2.2 普鲁兰酶异源表达第12-13页
    1.3 普鲁兰酶的工业应用第13-14页
        1.3.1 普鲁兰酶在淀粉食品生产中的应用第13页
        1.3.2 普鲁兰酶在酿造工业中的应用第13-14页
        1.3.3 普鲁兰酶在高麦芽糖浆生产中的应用第14页
        1.3.4 普鲁兰酶在高葡萄糖浆生产中的应用第14页
    1.4 立题意义与研究内容第14-16页
第二章 材料与方法第16-23页
    2.1 材料第16-18页
        2.1.1 菌株和质粒第16页
        2.1.2 引物第16页
        2.1.3 酶和试剂第16-17页
        2.1.4 仪器设备第17页
        2.1.5 主要培养基第17-18页
    2.2 方法第18-23页
        2.2.1 普鲁兰酶基因的设计和合成第18页
        2.2.2 目的基因的扩增第18页
        2.2.3 质粒的构建第18-19页
        2.2.4 巴斯德毕赤酵母感受态的制备与转化第19页
        2.2.5 巴斯德毕赤酵母高拷贝菌株筛选第19页
        2.2.6 重组巴斯德毕赤酵母的诱导表达第19页
        2.2.7 DNA Shuffling基因改组第19页
        2.2.8 改组基因的筛选第19页
        2.2.9 巴斯德毕赤酵母尿嘧啶缺陷型突变株的筛选第19页
        2.2.10 淀粉酶高产菌株的筛选第19-20页
        2.2.11 标记基因的剔除第20页
        2.2.12 菌体生物量测定第20页
        2.2.13 淀粉酶酶活测定第20页
        2.2.14 普鲁兰酶酶活测定第20-21页
        2.2.15 目的蛋白分离纯化第21页
        2.2.16 蛋白浓度检测第21页
        2.2.17 酶学性质的测定第21-22页
        2.2.18 重组巴斯德毕赤酵母的发酵优化第22-23页
第三章 结果与分析第23-56页
    3.1 来源于Bacillus deramificans和Bacillus naganoensis的普鲁兰酶基因在巴斯德毕赤酵母中的表达与重组酶性质分析第23-26页
        3.1.1 表达载体pPIC9K-BdP8和pPIC9K-BnP2的构建第23-24页
        3.1.2 普鲁兰酶编码基因BdP8和BnP2在巴斯德毕赤酵母中的表达第24页
        3.1.3 重组普鲁兰酶Bd P8和BnP2的纯化与酶学性质第24-26页
    3.2 嵌合体基因WXP03的获得第26-31页
        3.2.1 普鲁兰酶编码基因Bd P8和Bn P2的分子改组第27-28页
        3.2.2 筛选重组酶的可裂解大肠杆菌表达载体与筛选方法的确定第28-29页
        3.2.3 性能改善的嵌合体基因的筛选第29-31页
    3.3 普鲁兰酶嵌合体WXP03在巴斯德毕赤酵母中的表达与重组酶性质分析第31-34页
        3.3.1 普鲁兰酶嵌合体WXP03在巴斯德毕赤酵母中的表达第31-32页
        3.3.2 重组普鲁兰酶WXP03的纯化第32-33页
        3.3.3 重组普鲁兰酶WXP03的酶学性质分析第33-34页
    3.4 来源于B. deramificans的普鲁兰酶基因突变体BdP4在毕赤酵母中的表达与重组酶性质分析第34-38页
        3.4.1 普鲁兰酶基因突变体BdP4在巴斯德毕赤酵母中的表达第35页
        3.4.2 重组普鲁兰酶Bd P4的纯化第35-36页
        3.4.3 重组普鲁兰酶Bd P4的酶学性质分析第36-38页
    3.5 诱变提高普鲁兰酶基因WXP03在巴斯德毕赤酵母中表达第38-48页
        3.5.1 巴斯德毕赤酵母尿嘧啶营养缺陷型的获得第39-40页
        3.5.2 构建在AOX启动子控制下分泌表达淀粉酶基因SfA的重组质粒第40-44页
        3.5.3 重组酵母P. pastoris GS115/pPIC9K-SfA-TT-PpURA3-RP的构建与筛选第44-45页
        3.5.4 诱变与高表达普鲁兰酶基因WXP03的突变株的筛选第45-46页
        3.5.5 标记基因的剔除第46-47页
        3.5.6 PpURA3基因的回补第47-48页
    3.6 二次转化WXP03基因高表达菌株筛选第48-49页
    3.7 重组酵母P. pastoris GS115/pPIC9K-WXP03 WBB359的摇瓶发酵优化第49-53页
        3.7.1 重组巴斯德毕赤酵母在不同碳源下的生长曲线第49-50页
        3.7.2 重组巴斯德毕赤酵母在不同浓度碳源下的生长曲线第50页
        3.7.3 诱导起始时间对产普鲁兰酶的影响第50-51页
        3.7.4 初始菌浓对产普鲁兰酶的影响第51-52页
        3.7.5 诱导甲醇浓度对产普鲁兰酶的影响第52页
        3.7.6 诱导初始pH对产普鲁兰酶的影响第52-53页
    3.8 重组巴斯德毕赤酵母的 5 L发酵罐发酵条件的初始优化第53-56页
        3.8.1 发酵pH对产普鲁兰酶的影响第53-54页
        3.8.2 甲醇诱导时机对产普鲁兰酶的影响第54页
        3.8.3 甲醇流加量对产普鲁兰酶的影响第54-55页
        3.8.4 重组巴斯德毕赤酵母的产酶进程比较第55-56页
主要结论与展望第56-58页
    主要结论第56-57页
    展望第57-58页
致谢第58-59页
参考文献第59-62页
附录A: 作者在攻读硕士学位期间发表的论文第62-63页
附录B: 经密码子优化后的基因序列第63-67页
附录C: 普鲁兰酶氨基酸序列比对结果第67页

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