| 中文摘要 | 第7-8页 |
| Abstract | 第8-9页 |
| 1 前言 | 第10-25页 |
| 1.1 植物开花的调控 | 第10-18页 |
| 1.1.1 光周期途径 | 第10-14页 |
| 1.1.1.1 光信号感知 | 第10-11页 |
| 1.1.1.2 生物钟节律 | 第11-13页 |
| 1.1.1.3 长日照促进开花 | 第13-14页 |
| 1.1.2 春化途径 | 第14-15页 |
| 1.1.3 自主途径 | 第15-16页 |
| 1.1.4 GA途径 | 第16-17页 |
| 1.1.5 其他开花调控途径 | 第17-18页 |
| 1.2 开花调控途径的相互作用 | 第18-19页 |
| 1.3 花形态建成 | 第19-24页 |
| 1.3.1 MADS-box基因的发现 | 第20-21页 |
| 1.3.1.1“ABC”模型的建立及完善 | 第20-21页 |
| 1.3.2 MADS-box基因的结构和功能 | 第21-24页 |
| 1.3.2.1 MADS-box蛋白的结构 | 第21-22页 |
| 1.3.2.2 植物I型MADS-box基因的功能 | 第22页 |
| 1.3.2.3 植物II型MADS-box基因的功能 | 第22-24页 |
| 1.4 本研究依据与意义 | 第24-25页 |
| 2 材料与方法 | 第25-38页 |
| 2.1 实验材料 | 第25-27页 |
| 2.1.1 实验材料与生长条件 | 第25页 |
| 2.1.2 菌株与质粒载体 | 第25页 |
| 2.1.3 酶与生化试剂 | 第25页 |
| 2.1.4 引物合成与测序 | 第25-27页 |
| 2.2 实验方法 | 第27-38页 |
| 2.2.1 总RNA的提取与检测 | 第27页 |
| 2.2.2 反转录合成cDNA第一链 | 第27-28页 |
| 2.2.3 目的基因TaAGL32的克隆 | 第28-29页 |
| 2.2.4 目的片段的回收与检测 | 第29页 |
| 2.2.5 克隆载体的构建 | 第29页 |
| 2.2.6 大肠杆菌感受态细胞的制备 | 第29-30页 |
| 2.2.7 热激法转化大肠杆菌 | 第30页 |
| 2.2.8 阳性克隆的筛选及测序 | 第30-31页 |
| 2.2.9 碱法小量提取质粒DNA | 第31-32页 |
| 2.2.10 表达载体的构建 | 第32-33页 |
| 2.2.11 根瘤农杆菌感受态的制备与转化 | 第33页 |
| 2.2.12 烟草的瞬时转化 | 第33-34页 |
| 2.2.13 转基因小麦的获得 | 第34-35页 |
| 2.2.13.1 TaAGL32基因RNAi载体的构建 | 第34页 |
| 2.2.13.2 基因枪轰击小麦幼胚的遗传转化 | 第34-35页 |
| 2.2.14 基因组DNA的小量提取 | 第35页 |
| 2.2.15 转基因小麦的分子鉴定 | 第35-36页 |
| 2.2.15.1 基因组水平的转基因小麦鉴定 | 第35-36页 |
| 2.2.15.2 RNA水平的转基因小麦鉴定 | 第36页 |
| 2.2.16 转基因小麦表型观察及性状统计 | 第36-38页 |
| 3 结果 | 第38-48页 |
| 3.1 小麦TaAGL32基因的克隆 | 第38-40页 |
| 3.2 TaAGL32蛋白的亚细胞定位 | 第40页 |
| 3.3 TaAGL32基因组织表达模式分析 | 第40-41页 |
| 3.4 TaAGL32基因的表达呈现昼夜表达节律性 | 第41-42页 |
| 3.5 TaAGL32-RNAi载体的构建及遗传转化 | 第42-43页 |
| 3.6 TaAGL32-RNAi转基因小麦抽穗延迟 | 第43-44页 |
| 3.7 转基因小麦的田间表型和性状统计 | 第44-46页 |
| 3.8 四倍体小麦突变体agl32抽穗延迟 | 第46-47页 |
| 3.9 转基因株系的其它农艺性状 | 第47-48页 |
| 4 讨论 | 第48-50页 |
| 5 结论 | 第50-51页 |
| 参考文献 | 第51-62页 |
| 致谢 | 第62-63页 |
| 攻读学位期间发表的论文及成果 | 第63页 |
