| 中英文缩略表 | 第1-9页 |
| 中文摘要 | 第9-10页 |
| Abstract | 第10-12页 |
| 1 前言 | 第12-19页 |
| ·植物脯氨酸合成与代谢途径 | 第12-16页 |
| ·谷氨酸合成途径 | 第12-13页 |
| ·鸟氨酸合成途径 | 第13-14页 |
| ·脯氨酸的降解过程 | 第14页 |
| ·脯氨酸积累、降解的调节转换过程 | 第14-15页 |
| ·多胺和一氧化氮对脯氨酸合成的影响 | 第15-16页 |
| ·植物脯氨酸合成关键酶P5CS 和OAT 及其基因 | 第16-17页 |
| ·果树脯氨酸生物合成研究进展 | 第17页 |
| ·研究目的和意义 | 第17-19页 |
| 2 材料与方法 | 第19-32页 |
| ·试验材料 | 第19-21页 |
| ·试材 | 第19页 |
| ·植物材料培养与处理 | 第19-20页 |
| ·菌株与质粒 | 第20页 |
| ·酶及生化试剂 | 第20页 |
| ·PCR 引物 | 第20-21页 |
| ·试验方法 | 第21-32页 |
| ·平邑甜茶总RNA 的提取 | 第21页 |
| ·RT-PCR 反转录合成cDNA | 第21-23页 |
| ·MhP5CS 全长序列的扩增 | 第23-27页 |
| ·MhOAT 全长序列的扩增 | 第27-28页 |
| ·DNA 片段与克隆载体的连接 | 第28页 |
| ·大肠杆菌感受态细胞的制备和转化 | 第28-29页 |
| ·碱法小量质粒DNA 的提取 | 第29页 |
| ·凝胶电泳中DNA 片段的回收 | 第29-30页 |
| ·质粒DNA 的酶切鉴定 | 第30页 |
| ·DNA 序列测定 | 第30页 |
| ·MhP5CS 和MhOAT 半定量PCR 分析 | 第30页 |
| ·脯氨酸含量测定 | 第30-31页 |
| ·P5CS 酶活性测定 | 第31页 |
| ·OAT 酶活性测定 | 第31-32页 |
| 3 结果与分析 | 第32-54页 |
| ·平邑甜茶MhP5CS 基因克隆及其生物信息学分析 | 第32-40页 |
| ·MhP5CS 基因的分离 | 第32-33页 |
| ·平邑甜茶MhP5CS 基因编码蛋白同源性分析 | 第33-35页 |
| ·MhP5CS 与其他P5CS 基因的聚类分析 | 第35-37页 |
| ·平邑甜茶MhP5CS 编码蛋白的特性分析 | 第37-40页 |
| ·平邑甜茶MhP5CS 亚细胞定位分析 | 第40页 |
| ·平邑甜茶MhOAT 基因克隆与序列分析 | 第40-48页 |
| ·MhOAT 基因的分离 | 第40-41页 |
| ·平邑甜茶MhOAT 基因编码蛋白同源性分析 | 第41-43页 |
| ·MhOAT 与其他OAT 基因的聚类分析 | 第43-44页 |
| ·平邑甜茶MhOAT 编码蛋白的特性分析 | 第44-48页 |
| ·平邑甜茶MhOAT 亚细胞定位分析 | 第48页 |
| ·MhP5CS 和MhOAT 对镉胁迫的反应 | 第48-50页 |
| ·镉胁迫下平邑甜茶脯氨酸含量的变化 | 第48页 |
| ·镉胁迫下MhP5CS 和MhOAT 的表达 | 第48-49页 |
| ·镉胁迫对平邑甜茶P5CS 和OAT 酶活性变化的影响 | 第49-50页 |
| ·一氧化氮和多胺对镉胁迫下平邑甜茶脯氨酸生物合成的调节 | 第50-54页 |
| ·一氧化氮对镉胁迫下平邑甜茶脯氨酸生物合成的调节 | 第50-52页 |
| ·多胺对镉胁迫下平邑甜茶脯氨酸生物合成的影响 | 第52-54页 |
| 4 讨论 | 第54-57页 |
| ·平邑甜茶脯氨酸合成酶基因的克隆与分析 | 第54页 |
| ·镉胁迫对平邑甜茶脯氨酸生物合成的影响 | 第54-55页 |
| ·一氧化氮和多胺促进镉胁迫下平邑甜茶脯氨酸的生物合成 | 第55-57页 |
| 5 结论 | 第57-58页 |
| 参考文献 | 第58-68页 |
| 致谢 | 第68-69页 |
| 攻读学位期间发表论文情况 | 第69-70页 |
| 硕士学位论文内容简介及自评 | 第70页 |
