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靶向细胞自噬关键蛋白小分子抑制剂的发现、确证和机制研究

摘要第4-6页
abstract第6-7页
第1章 引言第11-23页
    1.1 细胞自噬的发生过程及分子机制第11-15页
        1.1.1 细胞自噬简介第11页
        1.1.2 细胞自噬的发生过程第11-12页
        1.1.3 细胞自噬的标志物第12页
        1.1.4 自噬核心机制的主要成员含有LIR基序第12-13页
        1.1.5 具有LIR基序的蛋白参与自噬体及其他囊泡的形成第13-15页
        1.1.6 具有LIR基序的蛋白作为选择性自噬的底物第15页
    1.2 细胞自噬的分子调控机制第15-16页
        1.2.1 mTOR信号通路磷酸化途径第15页
        1.2.2 类泛素化修饰途径第15-16页
        1.2.3 蛋白乙酰化调控途径第16页
    1.3 细胞自噬的生理功能及与疾病的关系第16-17页
        1.3.1 细胞自噬的生理功能第16页
        1.3.2 细胞自噬的异常与疾病第16-17页
    1.4 细胞自噬小分子抑制剂的研发进展第17-18页
        1.4.1 Vps34 及其复合体的小分子抑制剂第17页
        1.4.2 ULK1 小分子抑制剂第17-18页
        1.4.3 ATG4B小分子抑制剂第18页
    1.5 细胞自噬小分子抑制剂在肿瘤治疗中的应用前景第18-23页
        1.5.1 细胞自噬抑制肿瘤的发生第19-20页
        1.5.2 细胞自噬促进肿瘤的进展第20页
        1.5.3 细胞自噬抑制剂应用于肿瘤的临床试验第20-22页
        1.5.4 细胞自噬抑制剂用于肿瘤微环境调控第22-23页
第2章 基于荧光偏振的LC3B-LIR相互作用抑制剂高通量筛选体系的建立第23-41页
    2.1 引言第23-29页
    2.2 实验方法第29-33页
        2.2.1 GST-LC3B(1-125)的载体构建、蛋白表达与纯化第29-30页
        2.2.2 多肽设计第30-31页
        2.2.3 多肽合成第31-32页
        2.2.4 基于荧光偏振(FP)的高通量筛选平台的建立及优化第32-33页
        2.2.5 等温滴定量热实验(ITC)验证FP体系的可靠性第33页
    2.3 结果与讨论第33-39页
        2.3.1 示踪多肽的确定第33-34页
        2.3.2 GST-LC3B(1-125)浓度的确定第34-35页
        2.3.3 反应体系的优化结果第35-36页
        2.3.4 FP竞争实验检测LBP2与GST-LC3B的亲和力的可靠性第36-38页
        2.3.5 Z-factor的测定验证FP高通量筛选体系的高度稳定性第38-39页
    2.4 结论第39-41页
第3章 靶向LC3B-LIR相互作用界面小分子抑制剂的发现、确证和机制研究第41-77页
    3.1 引言第41-43页
    3.2 实验方法第43-52页
        3.2.1 虚拟筛选第43-44页
        3.2.2 载体构建、蛋白表达与纯化第44-47页
        3.2.3 基于荧光偏振的高通量筛选第47页
        3.2.4 虚拟筛选以及基于荧光偏振初筛化合物的合并及复筛第47页
        3.2.5 差式扫描荧光法结合实验(Differential Scanning Fluorimetry,DSF)第47-48页
        3.2.6 二维核磁实验第48页
        3.2.7 蛋白质质谱实验第48-49页
        3.2.8 晶体培养第49页
        3.2.9 晶体结构数据解析第49页
        3.2.10 细胞培养及稳定转染或敲减细胞株的建立第49-50页
        3.2.11 胞内蛋白热迁移实验(Cellular Thermal Shift Assay,CETSA) .第50页
        3.2.12 EGFP-LC3B蛋白纯化第50页
        3.2.13 免疫印迹实验第50-51页
        3.2.14 Pull-down 实验第51页
        3.2.15 免疫荧光染色与共聚焦拍照第51-52页
        3.2.16 化学合成第52页
    3.3 结果与讨论第52-74页
        3.3.1 虚拟筛选第52-53页
        3.3.2 基于荧光偏振的高通量筛选第53页
        3.3.3 初步筛选得到多个候选化合物第53-54页
        3.3.4 候选化合物的骨架确证第54-55页
        3.3.5 化合物与LC3B的结合确证第55-57页
        3.3.6 化合物与LC3B的结合模式分析第57-60页
        3.3.7 化合物的选择性分析第60-63页
            3.3.7.1 化合物对LC3B赖氨酸的选择性分析第60-62页
            3.3.7.2 化合物在LC3B同源家族蛋白间的选择性第62-63页
        3.3.8 细胞内确证化合物与干扰LC3与LIR的相互作用第63-70页
            3.3.8.1 自噬研究工具细胞系的建立第63页
            3.3.8.2 化合物特异性结合细胞内LC3B并修饰K49 氨基酸残基第63-64页
            3.3.8.3 Pull-down和免疫共沉淀实验验证化合物干扰LC3 与含LIR蛋白的相互作用第64-65页
            3.3.8.4 化合物破坏LC3B与自噬上游LIR蛋白的相互作用第65-70页
        3.3.9 化合物抑制细胞自噬的发生第70-71页
        3.3.10 细胞内确证化合物抑制LC3-I型向LC3-II型的转变第71-73页
        3.3.11 细胞内确证化合物抑制ATG4B对 LC3B的剪切第73-74页
    3.4 小结第74-77页
        3.4.1 突破与意义第74-75页
        3.4.2 展望第75-77页
第4章 靶向细胞自噬蛋白ATG4B小分子抑制剂的发现、确证和机制研究第77-99页
    4.1 引言第77-80页
    4.2 实验方法第80-86页
        4.2.1 载体构建、蛋白表达与纯化第80-84页
        4.2.2 基于均相时间分辨荧光的高通量筛选体系建立第84-85页
        4.2.3 差式扫描荧光法结合实验(Differential Scanning Fluorimetry,DSF)第85页
        4.2.4 基于SDS-PAGE的体外酶活方法测试与优化第85-86页
    4.3 结果与讨论第86-97页
        4.3.1 ATG4B蛋白的表达纯化及验证第86页
        4.3.2 His-LC3B-GST融合蛋白的表达纯化第86-87页
        4.3.3 均相时间分辨荧光高通量筛选方法的建立及优化第87-88页
        4.3.4 287-B03 系列化合物小分子抑制剂的发现及确证第88-94页
        4.3.5 305-H11 系列化合物小分子抑制剂的发现、确证及机制研究第94-97页
    4.4 小结第97-99页
全文总结第99-101页
参考文献第101-119页
致谢第119-121页
作者简历及攻读学位期间发表的学术论文与研究成果第121-122页

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