| 摘要 | 第4-6页 |
| Abstract | 第6-7页 |
| 第一章 引言 | 第13-24页 |
| 1.1 多糖简述 | 第13页 |
| 1.2 多糖的提取 | 第13-16页 |
| 1.2.1 水提取法 | 第14页 |
| 1.2.2 超声辅助提取法 | 第14页 |
| 1.2.3 微波辅助提取法 | 第14-15页 |
| 1.2.4 酶辅助提取法 | 第15-16页 |
| 1.3 海藻多糖的研究概况 | 第16-20页 |
| 1.3.1 海藻多糖的化学组成 | 第16-17页 |
| 1.3.2 海藻多糖的生物活性 | 第17-20页 |
| 1.3.2.1 抗氧化活性 | 第17-18页 |
| 1.3.2.2 免疫调节活性 | 第18页 |
| 1.3.2.3 酪氨酸酶抑制活性 | 第18-19页 |
| 1.3.2.4 降血糖作用 | 第19页 |
| 1.3.2.5 抗凝血功能 | 第19-20页 |
| 1.4 多糖构效关系 | 第20-22页 |
| 1.4.1 结构对生物活性的影响 | 第21页 |
| 1.4.2 理化性质对生物活性的影响 | 第21-22页 |
| 1.5 叉开网翼藻简介 | 第22页 |
| 1.6 本课题的立题背景和研究内容 | 第22-24页 |
| 1.6.1 立题背景 | 第22-23页 |
| 1.6.2 研究内容 | 第23-24页 |
| 1.6.2.1 叉开网翼藻多糖的提取条件优化 | 第23页 |
| 1.6.2.2 叉开网翼藻多糖的结构鉴定 | 第23页 |
| 1.6.2.3 叉开网翼藻多糖的生物活性分析 | 第23-24页 |
| 第二章 叉开网翼藻多糖的提取条件优化 | 第24-33页 |
| 2.1 引言 | 第24页 |
| 2.2 实验材料 | 第24-25页 |
| 2.2.1 原料 | 第24页 |
| 2.2.2 试剂 | 第24-25页 |
| 2.2.3 仪器和设备 | 第25页 |
| 2.3 实验方法 | 第25-26页 |
| 2.3.1 热水提取叉开网翼藻多糖 | 第25-26页 |
| 2.3.1.1 原料预处理 | 第25页 |
| 2.3.1.2 叉开网翼藻多糖的提取 | 第25页 |
| 2.3.1.3 单因素优化实验 | 第25-26页 |
| 2.3.1.4 响应面优化实验 | 第26页 |
| 2.4 实验结果 | 第26-32页 |
| 2.4.1 热水提取叉开网翼藻多糖的研究 | 第26-32页 |
| 2.4.1.1 单因素优化实验 | 第26-28页 |
| 2.4.1.2 响应面优化实验 | 第28-32页 |
| 2.5 本章小结 | 第32-33页 |
| 第三章 叉开网翼藻多糖的理化性质和结构表征 | 第33-42页 |
| 3.1 引言 | 第33页 |
| 3.2 实验材料 | 第33-34页 |
| 3.2.1 材料 | 第33页 |
| 3.2.2 试剂 | 第33页 |
| 3.2.3 仪器与设备 | 第33-34页 |
| 3.3 实验方法 | 第34-36页 |
| 3.3.1 红外光谱分析 | 第34页 |
| 3.3.2 糖醛酸含量的测定 | 第34页 |
| 3.3.2.1 葡萄糖醛酸标准曲线的绘制 | 第34页 |
| 3.3.2.2 糖醛酸含量的测定 | 第34页 |
| 3.3.3 硫酸基团含量测定 | 第34页 |
| 3.3.3.1 硫酸基团标准曲线的绘制 | 第34页 |
| 3.3.3.2 硫酸基团含量的测定 | 第34页 |
| 3.3.4 相对分子量的测定 | 第34-35页 |
| 3.3.5 单糖组成测定 | 第35页 |
| 3.3.5.1 酸水解 | 第35页 |
| 3.3.5.2 糖腈乙酸酯衍生物的制备 | 第35页 |
| 3.3.5.3 标准单糖衍生物的制备 | 第35页 |
| 3.3.5.4 衍生物的气相色谱检测 | 第35页 |
| 3.3.6 高碘酸氧化、Smith降解和GC分析 | 第35-36页 |
| 3.3.6.1 高碘酸钠标准曲线的绘制 | 第35-36页 |
| 3.3.6.2 高碘酸氧化 | 第36页 |
| 3.3.6.3 Smith降解以及GC分析 | 第36页 |
| 3.4 结果与讨论 | 第36-41页 |
| 3.4.1 红外光谱分析 | 第36-37页 |
| 3.4.2 糖醛酸含量及硫酸基团含量检测 | 第37-38页 |
| 3.4.3 单糖组成分析及相对分子量检测 | 第38-40页 |
| 3.4.4 高碘酸氧化及Smith降解分析 | 第40-41页 |
| 3.5 本章小结 | 第41-42页 |
| 第四章 叉开网翼藻多糖的生物活性分析 | 第42-49页 |
| 4.1 引言 | 第42页 |
| 4.2 主要仪器与试剂 | 第42-43页 |
| 4.2.1 主要材料 | 第42页 |
| 4.2.2 主要试剂 | 第42页 |
| 4.2.3 主要仪器 | 第42-43页 |
| 4.3 实验方法 | 第43-45页 |
| 4.3.1 叉开网翼藻多糖的抗氧化活性分析 | 第43页 |
| 4.3.1.1 DPPH自由基清除实验 | 第43页 |
| 4.3.1.2 羟基自由基清除实验 | 第43页 |
| 4.3.2 叉开网翼藻多糖的免疫调节活性分析 | 第43-44页 |
| 4.3.2.1 叉开网翼藻多糖对RAW264.7 细胞增殖能力的影响 | 第43-44页 |
| 4.3.2.2 叉开网翼藻多糖对RAW264.7 细胞分泌NO的影响 | 第44页 |
| 4.3.3 叉开网翼藻多糖的美白防护能力分析 | 第44-45页 |
| 4.3.3.1 清除超氧自由基能力(邻苯三酚自氧化法) | 第44页 |
| 4.3.3.2 酪氨酸酶抑制活性 | 第44-45页 |
| 4.4 结果与讨论 | 第45-47页 |
| 4.4.1 抗氧化活性 | 第45-46页 |
| 4.4.1.1 DPPH自由基清除实验 | 第45页 |
| 4.4.1.2 羟基自由基清除实验 | 第45-46页 |
| 4.4.2 叉开网翼藻多糖对巨噬细胞增殖活性及生成NO的影响 | 第46页 |
| 4.4.3 叉开网翼藻多糖的美白防护能力分析 | 第46-47页 |
| 4.4.3.1 超氧自由基清除实验 | 第46-47页 |
| 4.4.3.2 酪氨酸酶抑制活性 | 第47页 |
| 4.5 本章小结 | 第47-49页 |
| 第五章 结论与展望 | 第49-51页 |
| 5.1 主要结论 | 第49页 |
| 5.2 展望 | 第49-51页 |
| 参考文献 | 第51-58页 |
| 个人简历、硕士期间发表的学术论文以及研究成果 | 第58-59页 |
| 致谢 | 第59页 |
