摘要 | 第7-9页 |
ABSTRACT | 第9-10页 |
符号及缩略语说明 | 第11-12页 |
第一章 文献综述 | 第12-24页 |
1. 花色苷概述 | 第12-19页 |
1.1 花色苷的分布、种类及结构 | 第12-13页 |
1.2 花色苷的生物活性和药理作用 | 第13-14页 |
1.3 花色苷的提取方法 | 第14-16页 |
1.4 花色苷的生物合成途径及关键酶 | 第16-19页 |
2. 植物在淹水胁迫下的响应研究 | 第19-21页 |
2.1 淹水胁迫对植物造成的伤害 | 第19-20页 |
2.2 植物对淹水胁迫的响应 | 第20-21页 |
3. 研究目的及意义 | 第21-24页 |
第二章 淹水胁迫对杭菊形态、生长及生理特征的影响 | 第24-36页 |
1. 实验材料 | 第24-25页 |
2. 实验方法 | 第25-27页 |
2.1 生长和形态观察 | 第25-26页 |
2.2 生理指标测定 | 第26-27页 |
3. 结果与分析 | 第27-32页 |
3.1 杭菊花期及形态观察 | 第27-29页 |
3.2 淹水胁迫对杭菊生理的影响 | 第29-32页 |
4. 讨论 | 第32-36页 |
4.1 淹水胁迫对杭菊形态及生长的影响 | 第32-33页 |
4.2 淹水胁迫对杭菊花芽分化和花期的影响 | 第33页 |
4.3 杭菊对淹水胁迫的生理响应特征 | 第33-36页 |
第三章 花色苷合成相关基因的克隆及表达分析 | 第36-62页 |
第一节 CHS和DFR基因的克隆 | 第36-49页 |
1. 实验材料 | 第36-37页 |
1.1 植物材料 | 第36-37页 |
1.2 实验试剂 | 第37页 |
1.3 引物设计 | 第37页 |
2. 实验方法 | 第37-41页 |
2.1 总RNA的提取与鉴定 | 第37-38页 |
2.2 cDNA第一链合成 | 第38页 |
2.3 目的基因克隆 | 第38-41页 |
3. 结果与分析 | 第41-48页 |
3.1 RNA提取和反转录 | 第41页 |
3.2 CHS基因和DFR基因的克隆 | 第41-42页 |
3.3 生物信息学分析 | 第42-46页 |
3.4 系统进化树分析 | 第46-48页 |
4. 讨论 | 第48-49页 |
第二节 CHS和DFR基因的表达分析 | 第49-62页 |
1. 实验材料 | 第49-50页 |
1.1 植物材料 | 第49页 |
1.2 实验仪器 | 第49-50页 |
1.3 实验试剂 | 第50页 |
2. 实验方法 | 第50-51页 |
2.1 总RNA的提取 | 第50页 |
2.2 RNA质量的鉴定 | 第50页 |
2.3 PCR检测引物 | 第50-51页 |
2.4 实时荧光定量测定CHS及DFR表达量 | 第51页 |
3. 结果与分析 | 第51-60页 |
3.1 RNA提取质量鉴定 | 第51-52页 |
3.2 引物检测结果 | 第52页 |
3.3 CHS表达量特征分析 | 第52-56页 |
3.4 DFR表达量特征分析 | 第56-60页 |
4. 讨论 | 第60-62页 |
4.1 CHS基因表达特征及淹水胁迫对其表达量的影响 | 第60-61页 |
4.2 DFR基因表达特征及淹水胁迫对其表达量的影响 | 第61-62页 |
第四章 花色苷及其合成途径相关酶和基因的研究 | 第62-80页 |
1. 实验材料 | 第62-63页 |
2. 实验方法 | 第63-64页 |
2.1 花色苷的提取与测定 | 第63页 |
2.2 CHS酶的提取与测定 | 第63-64页 |
2.3 DFR酶活性的测定 | 第64页 |
3. 结果与分析 | 第64-78页 |
3.1 淹水胁迫对杭菊花色苷含量的影响 | 第64-68页 |
3.2 淹水胁迫对杭菊CHS酶含量的影响 | 第68-72页 |
3.3 淹水胁迫对杭菊DFR酶活性的影响 | 第72-76页 |
3.4 花色苷与其合成相关基因和酶的相关性分析 | 第76-78页 |
4. 讨论 | 第78-80页 |
4.1 花色苷合成的特点 | 第78页 |
4.2 CHS、DFR基因与花色苷合成的关系 | 第78页 |
4.3 CHS酶和DFR酶与花色苷合成的关系 | 第78-80页 |
结论与创新点 | 第80-82页 |
1 全文结论 | 第80页 |
2 创新点 | 第80-82页 |
参考文献 | 第82-92页 |
发表论文及专利申请情况 | 第92-94页 |
致谢 | 第94页 |