| 中文摘要 | 第4-8页 |
| abstract | 第8-12页 |
| 前言 | 第18-20页 |
| 第1章 绪论 | 第20-24页 |
| 第2章 文献综述 | 第24-40页 |
| 2.1 胶质母细胞瘤研究现状 | 第24-29页 |
| 2.1.1 概述 | 第24页 |
| 2.1.2 GBM分子遗传学研究 | 第24-26页 |
| 2.1.3 GBM的传统治疗 | 第26-27页 |
| 2.1.4 GBM的新疗法 | 第27-29页 |
| 2.2 端粒酶与hTERT可变剪接 | 第29-38页 |
| 2.2.1 概述 | 第29-30页 |
| 2.2.2 hTERT可变剪接 | 第30-32页 |
| 2.2.3 hTERT可变剪接与端粒酶活性 | 第32-34页 |
| 2.2.4 hTERT可变剪接与端粒长度 | 第34-35页 |
| 2.2.5 hTERT可变剪接与肿瘤诊断及预后 | 第35-36页 |
| 2.2.6 hTER可变剪接的调控 | 第36-38页 |
| 本论文的立题依据和研究内容 | 第38-40页 |
| 第3章 实验材料与方法 | 第40-60页 |
| 3.1 主要实验器材与试剂 | 第40-42页 |
| 3.1.1 主要实验器材 | 第40-41页 |
| 3.1.2 主要实验试剂 | 第41-42页 |
| 3.2 胶质瘤标本收集与冻存 | 第42页 |
| 3.3 样本临床及病理资料整理 | 第42-43页 |
| 3.4 细胞系及细胞培养 | 第43-44页 |
| 3.5 实验试剂配制及储存 | 第44-46页 |
| 3.6 实验技术与方法 | 第46-59页 |
| 3.6.1 胶质瘤样本及细胞系总RNA提取及cDNA合成 | 第46-47页 |
| 3.6.2 通过RT-PCR检测胶质瘤样本及细胞系hTERT可变剪接体的表达 | 第47-50页 |
| 3.6.3 通过TRAP实验检测胶质瘤样本及细胞系端粒酶活性. | 第50-52页 |
| 3.6.4 通过WesternBlot检测细胞蛋白表达的变化 | 第52-55页 |
| 3.6.5 通过MTT检测CX-5461对GBM细胞系的抑制率 | 第55-56页 |
| 3.6.6 细胞克隆形成实验检测CX-5461对GBM细胞增殖的影响 | 第56-57页 |
| 3.6.7 流式细胞术检测CX-5461对GBM细胞周期/凋亡的影响 | 第57-58页 |
| 3.6.8 通过免疫荧光方法检测细胞端粒DNA损伤相关蛋白荧光强度 | 第58-59页 |
| 3.7 统计学分析 | 第59-60页 |
| 第4章 实验结果 | 第60-86页 |
| 4.1 胶质瘤hTERT可变剪接 | 第60-68页 |
| 4.1.1 胶质瘤hTERT可变剪接体的存在形式 | 第60-62页 |
| 4.1.2 胶质瘤全长hTERT表达与端粒酶活性具有一致性 | 第62-66页 |
| 4.1.3 端粒酶活性及全长hTERT表达提示不良的胶质瘤患者预后.. | 第66-68页 |
| 4.2 胶质母细胞瘤hTERT可变剪接调控 | 第68-74页 |
| 4.2.1 G4链配体CX-5461调控胶质母细胞瘤hTERT可变剪接.. | 第68-71页 |
| 4.2.2 CX-5461不通过改变hTERT蛋白表达而抑制端粒酶活性 | 第71-74页 |
| 4.3 CX-5461对GBM细胞的生物学作用 | 第74-86页 |
| 4.3.1 CX-5461对GBM细胞增殖的抑制作用 | 第74-76页 |
| 4.3.2 CX-5461可诱导GBM细胞发生G2-M期周期阻滞 | 第76-79页 |
| 4.3.3 CX-5461导致GBM细胞凋亡的发生 | 第79-81页 |
| 4.3.4 CX-5461可诱导GBM细胞端粒DNA损伤反应 | 第81-86页 |
| 第5章 讨论 | 第86-90页 |
| 第6章 结论 | 第90-92页 |
| 参考文献 | 第92-108页 |
| 作者简介及在学期间所取得的科研成果 | 第108-110页 |
| 致谢 | 第110页 |
