摘要 | 第8-10页 |
Abstract | 第10-11页 |
1 引言 | 第12-23页 |
1.1 酒精性肝损伤 | 第12-16页 |
1.1.1 酒精性肝损伤易感因素 | 第13-14页 |
1.1.2 酒精性肝损伤作用机制 | 第14-16页 |
1.2 谷胱甘肽硫转移酶A1研究进展 | 第16-17页 |
1.2.1 GSTs概述 | 第16页 |
1.2.2 GSTA1一般特性 | 第16-17页 |
1.3 原代肝细胞模型研究进展 | 第17-20页 |
1.3.1 原代肝细胞分离 | 第17-19页 |
1.3.2 常用的原代肝细胞培养方式 | 第19页 |
1.3.3 原代肝细胞应用 | 第19-20页 |
1.4 龙葵概述 | 第20-22页 |
1.4.1 龙葵的化学成分 | 第20-21页 |
1.4.2 龙葵的药理作用 | 第21页 |
1.4.3 龙葵的毒理作用 | 第21-22页 |
1.5 本课题研究的目的和意义 | 第22-23页 |
2 材料与方法 | 第23-33页 |
2.1 材料 | 第23-26页 |
2.1.1 实验动物 | 第23页 |
2.1.2 主要试剂 | 第23-24页 |
2.1.3 主要仪器设备 | 第24页 |
2.1.4 主要溶液配制 | 第24-26页 |
2.2 方法 | 第26-33页 |
2.2.1 小鼠原代肝细胞的分离与培养 | 第26-27页 |
2.2.2 酒精诱导小鼠原代肝细胞损伤模型的建立 | 第27-29页 |
2.2.3 龙葵对酒精诱导的原代肝细胞损伤的保护作用 | 第29-30页 |
2.2.4 龙葵对酒精诱导的小鼠急性肝损伤的保护作用 | 第30-32页 |
2.2.5 数据统计 | 第32-33页 |
3 结果与分析 | 第33-44页 |
3.1 小鼠原代肝细胞的分离与培养 | 第33页 |
3.1.1 小鼠原代肝细胞数量和活率 | 第33页 |
3.1.2 小鼠原代肝细胞的形态学观察 | 第33页 |
3.2 酒精诱导小鼠原代肝细胞损伤模型的建立 | 第33-41页 |
3.2.1 最佳损伤浓度试验 | 第33-36页 |
3.2.2 最佳损伤时间试验 | 第36-39页 |
3.2.3 肝细胞培养上清GSTA1量效和时效变化 | 第39-41页 |
3.3 龙葵对酒精诱导的原代肝细胞损伤的保护作用 | 第41页 |
3.4 龙葵对酒精诱导的小鼠急性肝损伤的保护作用 | 第41-44页 |
4 讨论 | 第44-48页 |
4.1 原代小鼠肝细胞的分离与培养 | 第44-45页 |
4.2 酒精诱导小鼠原代肝细胞损伤模型的建立 | 第45页 |
4.3 GSTA1量效和时效变化及意义 | 第45-46页 |
4.4 龙葵对酒精诱导的原代肝细胞损伤的保护作用 | 第46-47页 |
4.5 龙葵对酒精诱导的小鼠急性肝损伤的保护作用 | 第47-48页 |
5 结论 | 第48-49页 |
致谢 | 第49-50页 |
参考文献 | 第50-57页 |
附录 | 第57-59页 |
攻读硕士学位期间发表的学术论文 | 第59页 |