| 摘要 | 第6-7页 |
| Abstract | 第7页 |
| 缩略词表 | 第8-12页 |
| 第1章 引言 | 第12-18页 |
| 1.1 背景及目的 | 第12-13页 |
| 1.2 文献综述 | 第13-18页 |
| 1.2.1 五味子酯甲功效研究进展 | 第13页 |
| 1.2.2 五味子酯甲抗帕金森病研究 | 第13-14页 |
| 1.2.3 五味子酯甲对缺血再灌注损伤的保护作用 | 第14页 |
| 1.2.4 五味子酯甲抗炎作用研究 | 第14-15页 |
| 1.2.5 五味子酯甲对破骨细胞的保护作用 | 第15页 |
| 1.2.6 五味子酯甲神经细胞保护作用 | 第15-16页 |
| 1.2.7 五味子酯甲对学习记忆障碍的改善作用 | 第16页 |
| 1.2.8 氧化应激与学习记忆障碍 | 第16-18页 |
| 第2章 实验研究 | 第18-28页 |
| 2.1 实验材料 | 第18-19页 |
| 2.1.1 实验动物 | 第18页 |
| 2.1.2 药品及试剂 | 第18页 |
| 2.1.3 实验仪器 | 第18-19页 |
| 2.2 实验方法 | 第19-21页 |
| 2.2.1 动物分组及给药 | 第19-20页 |
| 2.2.2 行为学实验 | 第20-21页 |
| 2.2.3 SCA对小鼠海马组织病理学改变的影响 | 第21页 |
| 2.3 SCA改善学习记忆能力的相关机制探讨 | 第21-26页 |
| 2.3.1 SCA对小鼠外周血及海马组织中SOD活性及和MDA水平的影响 | 第21-22页 |
| 2.3.2 SCA对各组小鼠海马组织中的8-OHdG的影响 | 第22页 |
| 2.3.3 Q-PCR检测脑组织中p19、p53、p21、cyclinD1、CDK4及RB的mRNA表达水平 | 第22-24页 |
| 2.3.4 Westernblotting检测脑组织中p19、p53、p21、cyclinD1、CDK4及RB的蛋白表达 | 第24-26页 |
| 2.4 统计学处理 | 第26-28页 |
| 第3章 实验结果 | 第28-36页 |
| 3.1 SCA对各组小鼠学习记忆能力的影响 | 第28-30页 |
| 3.1.1 避暗实验观察SCA对各组小鼠学习记忆能力的影响 | 第28页 |
| 3.1.2 Morris水迷宫实验观察SCA对各组小鼠学习记忆能力的影响 | 第28-30页 |
| 3.2 SCA 对衰老小鼠脑组织病理学改变的影响 | 第30-31页 |
| 3.3 SCA对小鼠脑组织SOD活性、MDA水平的影响 | 第31页 |
| 3.4 SCA对小鼠海马组织中8-OHdG水平的影响 | 第31-32页 |
| 3.5 Q-PCR检测SCA对小鼠海马组织中p19、p53、p21、cyclinD1、CDK4及RB的mRNA表达 | 第32-33页 |
| 3.6 WesternBlot法检测SCA对小鼠海马组织中p19、p53、p21、cyclinD1、CDK4蛋白表达及RB蛋白磷酸化程度的表达 | 第33-36页 |
| 第4章 讨论 | 第36-40页 |
| 4.1 D-半乳糖致衰老动物模型造模原理 | 第36页 |
| 4.2 改善学习记忆的行为学表现 | 第36-37页 |
| 4.3 SCA改善学习记忆能力的相关机制 | 第37-40页 |
| 4.3.1 氧化应激与学习记忆障碍之间的内在关系 | 第37-38页 |
| 4.3.2 p19、p53、p21、cyclinD1、CDK4及RB与学习记忆障碍的关系 | 第38-40页 |
| 第5章 结论 | 第40-42页 |
| 参考文献 | 第42-50页 |
| 作者简介及科研成果 | 第50-52页 |
| 致谢 | 第52页 |
