| 摘要 | 第2-6页 |
| abstract | 第6-9页 |
| 缩略词注释表 | 第13-15页 |
| 引言 | 第15-18页 |
| 1.槟榔及其炮制品的研究概况和存在的问题 | 第15-16页 |
| 2.中药炮制机制研究概况 | 第16-17页 |
| 3.本课题来源和研究思路 | 第17-18页 |
| 第一部分 槟榔炒焦“长于消食导滞”的炮制机制研究 | 第18-71页 |
| 第一节 槟榔炒焦“长于消食导滞”的验证 | 第19-28页 |
| 1 实验材料 | 第19-21页 |
| 1.1 药材 | 第19页 |
| 1.2 实验动物 | 第19页 |
| 1.3 主要试剂和耗材 | 第19-20页 |
| 1.4 主要仪器设备 | 第20-21页 |
| 1.5 主要试液的配制 | 第21页 |
| 2 实验方法 | 第21-24页 |
| 2.1 焦槟榔样品的制备 | 第21-22页 |
| 2.2 生槟榔和焦槟榔水提取物的制备 | 第22页 |
| 2.3 生槟榔和焦槟榔水提物对大鼠胃肠平滑肌张力的影响 | 第22-23页 |
| 2.4 生槟榔和焦槟榔水提物对小鼠胃肠运动的作用 | 第23-24页 |
| 2.5 生槟榔和焦槟榔提取物对阿托品所致胃肠运动迟缓小鼠的作用 | 第24页 |
| 2.6 数据分析 | 第24页 |
| 3 实验结果与分析 | 第24-27页 |
| 3.1 生槟榔和焦槟榔对离体胃肠平滑肌张力的活性比较 | 第24-25页 |
| 3.2 生槟榔和焦槟榔对小鼠胃排空和肠推进的作用 | 第25-26页 |
| 3.3 生槟榔和焦槟榔对阿托品所致胃肠功能迟缓小鼠模型胃肠运动的影响 | 第26-27页 |
| 4 结论 | 第27-28页 |
| 第二节 槟榔炒焦前后的化学成分变化 | 第28-52页 |
| 1 实验材料 | 第28-30页 |
| 1.1 药材 | 第28页 |
| 1.2 主要试剂与耗材 | 第28-29页 |
| 1.3 主要仪器设备 | 第29-30页 |
| 2 实验方法 | 第30-39页 |
| 2.1 槟榔炒焦前后美拉德产物的分离鉴定及产生途径分析 | 第30-35页 |
| 2.2 槟榔炒焦前后多糖变化 | 第35-39页 |
| 2.3 数据分析 | 第39页 |
| 3 实验结果与分析 | 第39-51页 |
| 3.1 槟榔炒焦后新生成成分的鉴定 | 第39-41页 |
| 3.2 槟榔炒焦前后A420值和pH值变化 | 第41页 |
| 3.3 槟榔炒焦前后氨基酸的变化 | 第41-42页 |
| 3.4 槟榔炒焦前后单糖和低聚糖成分的变化 | 第42-44页 |
| 3.5 槟榔炒焦新产生成分生成途径探讨 | 第44-45页 |
| 3.6 槟榔炒焦前后多糖成分的变化 | 第45-51页 |
| 3.6.1 单因素考察结果 | 第45-46页 |
| 3.6.2 响应面模型预测及统计分析 | 第46-48页 |
| 3.6.3 槟榔炒焦前后多糖的变化 | 第48-51页 |
| 4 结论 | 第51-52页 |
| 第三节 槟榔炒制样品的谱效关系研究 | 第52-68页 |
| 1 实验材料 | 第52-53页 |
| 1.1 药材 | 第52页 |
| 1.2 实验动物 | 第52页 |
| 1.3 主要试剂 | 第52-53页 |
| 1.4 主要仪器设备 | 第53页 |
| 2 实验方法 | 第53-57页 |
| 2.1 槟榔炒制样品的制备 | 第53-54页 |
| 2.2 槟榔炒制样品的HPLC化学指纹图谱研究 | 第54-56页 |
| 2.3 槟榔炒制样品对十二指肠平滑肌张力的作用 | 第56-57页 |
| 2.4 槟榔炒制样品谱效关系研究 | 第57页 |
| 2.5 数据分析 | 第57页 |
| 3 结果与分析 | 第57-67页 |
| 3.1 指纹图谱条件的选择和方法学考察 | 第57-62页 |
| 3.2 槟榔炒制样品共有模式的建立和主要特征峰归属 | 第62-63页 |
| 3.3 槟榔炒制样品对十二指肠平滑肌张力的作用 | 第63页 |
| 3.4 谱效相关性分析 | 第63-67页 |
| 4 结论 | 第67-68页 |
| 第四节 本部分小结与讨论 | 第68-71页 |
| 第二部分 焦槟榔中槟榔碱的适宜含量研究 | 第71-105页 |
| 第一节 槟榔碱不同程度去除焦槟榔样品的制备 | 第72-81页 |
| 1 实验材料 | 第72-73页 |
| 1.1 药材 | 第72页 |
| 1.2 主要试剂 | 第72页 |
| 1.3 主要仪器设备 | 第72-73页 |
| 2 实验方法 | 第73-80页 |
| 2.1 焦槟榔饮片槟榔碱的HPLC含量测定 | 第73-76页 |
| 2.2 槟榔碱完全去除的焦槟榔样品的制备 | 第76-80页 |
| 3 结论 | 第80-81页 |
| 第二节 焦槟榔中槟榔碱适宜含量研究 | 第81-100页 |
| 1 实验材料 | 第81-85页 |
| 1.1 细胞系 | 第81页 |
| 1.2 实验动物 | 第81页 |
| 1.3 主要试剂 | 第81-83页 |
| 1.4 主要仪器设备 | 第83页 |
| 1.5 主要试液的配制 | 第83-85页 |
| 2 实验方法 | 第85-92页 |
| 2.1 WAC-Rx对HaCaT细胞毒性的影响 | 第85-87页 |
| 2.2 WAC-Rx对小鼠的急性毒性研究 | 第87-88页 |
| 2.3 WAC-Rx对大鼠胃肠平滑肌张力的影响 | 第88-89页 |
| 2.4 WAC-Rx对小鼠胃肠运动的影响 | 第89页 |
| 2.5 WAC-Rx对HaCaT凋亡的影响 | 第89-90页 |
| 2.6 WAC-Rx对凋亡蛋白(Caspase-3)、原癌基因(c-jun和c-fos)和促炎症因子(COX-2、PGE2和IL-1α)在HaCaT细胞中表达的影响 | 第90-91页 |
| 2.7 数据分析 | 第91-92页 |
| 3 实验结果与分析 | 第92-99页 |
| 3.1 HaCaT细胞 | 第92页 |
| 3.2 MTT法检测WAC-Rx对HaCaT的IC50值 | 第92-93页 |
| 3.3 WAC-Rx对小鼠的急性毒性 | 第93页 |
| 3.4 WAC-Rx对大鼠胃肠平滑肌张力的作用 | 第93-94页 |
| 3.5 WAC-Rx对小鼠胃肠功能的作用 | 第94-95页 |
| 3.6 WAC-Rx对HaCaT细胞凋亡的影响 | 第95-97页 |
| 3.7 WAC-Rx对凋亡蛋白(C-caspase-3)、原癌基因(c-jun和c-fos)和促炎症因子(COX-2,PGE2和IL-1α)在HaCaT细胞表达的影响 | 第97-99页 |
| 4 结论 | 第99-100页 |
| 第三节 本部分小结 | 第100-105页 |
| 结语 | 第105-106页 |
| 参考文献 | 第106-113页 |
| 综述 | 第113-145页 |
| 参考文献 | 第137-145页 |
| 在读期间公开发表的学术论文、专著及科研成果 | 第145-147页 |
| 致谢 | 第147-149页 |
