| 第一部分 Radixin表达下调对SGC-7901细胞中MRP2表达及功能的影响 | 第5-49页 |
| 摘要 | 第5-6页 |
| Abstract | 第6页 |
| 综述 | 第7-18页 |
| 1. 药物转运体及其在药物代谢中的作用 | 第7-9页 |
| 2. 药物转运体与肿瘤多药耐药的相关性 | 第9-10页 |
| 3. MRP蛋白家族及MRP2 | 第10-13页 |
| 4. ERM蛋白家族概述 | 第13-16页 |
| 5. ERM家族与MRP家族关系的研究进展 | 第16-18页 |
| 材料与仪器 | 第18-20页 |
| 1. 材料与试剂 | 第18-19页 |
| 2. 实验仪器 | 第19-20页 |
| 实验方法 | 第20-30页 |
| 1. 人源SGC细胞中ERM基因表达的鉴定 | 第20-23页 |
| 2. siRNA表达载体的构建、鉴定及制备 | 第23-24页 |
| 3. siRNA稳定表达的SGC细胞克隆的筛选 | 第24页 |
| 4. radixin基因特异性稳定下调的SGC细胞克隆的鉴定 | 第24-25页 |
| 5. 各克隆细胞株中MRP家族基因mRNA表达的鉴定 | 第25-26页 |
| 6. radixin表达下调对SGC-7901细胞中MRP2表达影响的鉴定 | 第26-27页 |
| 7. radixin表达下调对SGC-7901细胞calcein外排功能影响的鉴定 | 第27-28页 |
| 8. calcein外排实验中各实验组细胞的活力鉴定 | 第28页 |
| 9. radixin表达下调对PXR,CAR和FXR的mRNA表达影响的鉴定 | 第28-30页 |
| 实验结果 | 第30-38页 |
| 1. 人源SGC细胞中ERM基因表达的鉴定 | 第30页 |
| 2. siRNA稳定表达的SGC细胞克隆中radixin下调程度鉴定 | 第30-32页 |
| 3. MRP家族成员在野生型SGC-7901,control siRNA和radixin siRNA稳定表达的细胞中mRNA表达的情况 | 第32-33页 |
| 4. radixin siRNA稳定表达的细胞中MRP2表达下调 | 第33-34页 |
| 5. radixin基因特异性下调导致calcein外排效率降低 | 第34-36页 |
| 6. radixin基因特异性下调对细胞活力的影响 | 第36-37页 |
| 7. radixin基因特异性下调对三个MRP2重要转录因子PXR,CAR和FXR的影响 | 第37-38页 |
| 实验讨论 | 第38-40页 |
| 结论 | 第40-41页 |
| 参考文献 | 第41-49页 |
| 第二部分 AH-1对AD神经元细胞模型神经毒性的保护作用及其治疗AD的分子机制研究 | 第49-70页 |
| 前言 | 第49-52页 |
| 材料与仪器 | 第52-53页 |
| 实验方法 | 第53-56页 |
| 1. 细胞培养 | 第53页 |
| 2. IDO的mRNA表达鉴定 | 第53页 |
| 3. IDO的酶活鉴定 | 第53-54页 |
| 4. MTT法检测细胞活力 | 第54页 |
| 5. Hoechst荧光标记法检测细胞凋亡 | 第54页 |
| 6. 线粒体跨膜电位法(MMP)检测细胞凋亡 | 第54-56页 |
| 实验结果 | 第56-64页 |
| 1. AD神经元模型的建立 | 第56-58页 |
| 2. AH-1对AD神经元模型中IDO的mRNA表达的影响 | 第58-59页 |
| 3. AH-1对AD神经元模型中IDO的酶活力的影响 | 第59-60页 |
| 4. AH-1对AD神经元模型细胞活力损伤的保护作用 | 第60-61页 |
| 5. AH-1对AD神经元模型细胞凋亡的保护作用 | 第61-64页 |
| 实验讨论 | 第64-66页 |
| 结论 | 第66页 |
| 参考文献 | 第66-70页 |
| 致谢 | 第70-71页 |
