| 致谢 | 第5-6页 |
| 中文摘要 | 第6-9页 |
| Abstract | 第9-12页 |
| 缩写/符号清单 | 第13-18页 |
| 1 绪论 | 第18-35页 |
| 1.1 心肌缺血再灌注损伤的概念及研究进展 | 第18-20页 |
| 1.2 线粒体通透性转换孔的概念、研究进展及与心肌缺血再灌注损伤 | 第20-23页 |
| 1.3 氧化应激与心肌缺血再灌注损伤及线粒体通透性转换孔的关系 | 第23-25页 |
| 1.4 Dynamins的概述和研究进展及Dynasore的药理作用 | 第25-28页 |
| 1.5 氧化应激与心力衰竭 | 第28-32页 |
| 1.6 研究目的、意义和方法 | 第32-35页 |
| 1.6.1 研究目的和意义 | 第32-33页 |
| 1.6.2 研究内容和方法 | 第33-35页 |
| 2 实验材料与方法 | 第35-56页 |
| 2.1 仪器 | 第35-37页 |
| 2.2 试剂和药物 | 第37-39页 |
| 2.3 研究对象 | 第39-40页 |
| 2.4 实验方法 | 第40-56页 |
| 2.4.1 小鼠心脏缺血再灌注离体实验流程图 | 第40页 |
| 2.4.2 实验动物分组、存活者随机分组 | 第40-41页 |
| 2.4.3 小鼠心脏缺血再灌注模型建立 | 第41页 |
| 2.4.4 血流动力学测定 | 第41-42页 |
| 2.4.5 灌流液标本留取和TNI检测 | 第42页 |
| 2.4.6 心肌组织标本留取和计算心肌梗死面积 | 第42-43页 |
| 2.4.7 原代分离小鼠心肌细胞实验流程图 | 第43-44页 |
| 2.4.8 实验分组 | 第44-47页 |
| 2.4.9 成年心肌细胞的分离培养 | 第47-48页 |
| 2.4.10 乳鼠心肌细胞的分离培养 | 第48-49页 |
| 2.4.11 成年心肌细胞存活度和活力测定 | 第49页 |
| 2.4.12 成年心肌细胞ATP测定 | 第49-50页 |
| 2.4.13 成年心肌细胞共聚焦显微镜测定存活细胞线粒体形态 | 第50-51页 |
| 2.4.14 乳鼠心肌细胞Mito Tracker工作浓度的摸索 | 第51页 |
| 2.4.15 乳鼠心肌细胞线粒体形态变化检测 | 第51-52页 |
| 2.4.16 乳鼠心肌细胞线粒体△ψm变化程度检测 | 第52-53页 |
| 2.4.17 乳鼠心肌细胞WB检测Dynasore、Mdivi-1对心肌细胞Dynamin2和Drp1基因的蛋白表达变化 | 第53-55页 |
| 2.4.18 统计分析 | 第55-56页 |
| 3 实验结果 | 第56-65页 |
| 3.1 血流动力学结果 | 第56-58页 |
| 3.2 Dynasore减少心肌梗死面积 | 第58页 |
| 3.3 Dynasore降低灌流液TNI浓度 | 第58页 |
| 3.4 Dynasore减少心肌细胞损伤 | 第58-60页 |
| 3.5 Dynasore提高应激心肌细胞内ATP浓度 | 第60-61页 |
| 3.6 Dynasore抑制氧化应激诱导的HeLa细胞线粒体分裂 | 第61页 |
| 3.7 乳鼠心肌细胞分离 | 第61页 |
| 3.8 线粒体形态变化检测 | 第61-62页 |
| 3.9 线粒体△ψm变化程度检测 | 第62-63页 |
| 3.10 WB检测Dynasore、Mdivi-1对心肌细胞Dynamin2和Drp1基因的蛋白表达变化 | 第63-65页 |
| 4 附图 | 第65-76页 |
| 5 讨论 | 第76-86页 |
| 5.1 Dynasore减轻小鼠心脏缺血再灌注损伤 | 第77-79页 |
| 5.2 Dynasore保护小鼠心肌细胞线粒体形态和功能 | 第79-82页 |
| 5.3 Dynasore改善心肌细胞ATP储存和能量消耗 | 第82-83页 |
| 5.4 Dynasore减少心肌细胞Dynamin2和Drp1蛋白表达 | 第83-84页 |
| 5.5 在Langendorff小鼠灌注心脏,Dynasore保护缺血再灌注损伤后的病理性LVEDP升高 | 第84-86页 |
| 全文结论 | 第86-87页 |
| 参考文献 | 第87-101页 |
| 综述 | 第101-133页 |
| 参考文献 | 第117-133页 |
| 作者简历及在学期间所取得的科研成果 | 第133-134页 |
