| 摘要 | 第4-5页 |
| Abstract | 第5-6页 |
| 1 引言 | 第10-18页 |
| 1.1 布鲁菌病的概述 | 第10-14页 |
| 1.1.1 病原学 | 第10页 |
| 1.1.2 流行病学 | 第10-11页 |
| 1.1.3 临床症状 | 第11页 |
| 1.1.4 分布与危害 | 第11页 |
| 1.1.5 发病机理 | 第11页 |
| 1.1.6 布鲁菌病的诊断 | 第11-13页 |
| 1.1.7 布鲁菌病的防控 | 第13-14页 |
| 1.2 肥大细胞的研究概述 | 第14-17页 |
| 1.2.1 肥大细胞的产生及其主要作用 | 第14-15页 |
| 1.2.2 肥大细胞的局部募集 | 第15-16页 |
| 1.2.3 肥大细胞的脱颗粒机制 | 第16页 |
| 1.2.4 肥大细胞 Toll 样受体的研究 | 第16-17页 |
| 1.3 研究目的及意义 | 第17-18页 |
| 2 材料与方法 | 第18-29页 |
| 2.1 试验材料 | 第18-19页 |
| 2.1.1 试验动物 | 第18页 |
| 2.1.2 主要试剂及药品 | 第18页 |
| 2.1.3 主要仪器 | 第18-19页 |
| 2.2 试验方法 | 第19-28页 |
| 2.2.1 小鼠肥大细胞获取方法的选择与鉴定 | 第19-21页 |
| 2.2.2 体外肥大细胞应答布鲁菌感染 TLRs mRNA 的表达 | 第21-24页 |
| 2.2.3 抗 c-kit 抗体清除小鼠 MC 的效果观察 | 第24-26页 |
| 2.2.4 小鼠体内应答布鲁菌感染的效应 | 第26-28页 |
| 2.3 统计学处理 | 第28-29页 |
| 3 结果 | 第29-42页 |
| 3.1 小鼠肥大细胞获取方法的选择与鉴定 | 第29-30页 |
| 3.1.1 三种腹腔分离方法的细胞活率、肥大细胞纯度和细胞总数统计结果 | 第29-30页 |
| 3.1.2 肥大细胞在 30%:80%的 Percoll 梯度分离液中的动态分布 | 第30页 |
| 3.1.3 肥大细胞 P815 株的培养 | 第30页 |
| 3.2 体外 MC 应答布鲁菌感染 TLRs mRNA 的表达 | 第30-32页 |
| 3.3 小鼠体内应答布鲁菌感染的效应 | 第32-42页 |
| 3.3.1 抗 c-kit 抗体清除小鼠 MC 的效果观察 | 第32-33页 |
| 3.3.2 血清中 TNF-α的含量 | 第33-34页 |
| 3.3.3 血清中 IFN-γ的含量 | 第34-36页 |
| 3.3.4 血清中 IL-4 的含量 | 第36-38页 |
| 3.3.5 肥大细胞的形态和数量变化 | 第38-40页 |
| 3.3.6 布鲁菌 S2 株与布鲁菌 S2WboA-/-株诱导小鼠阴道粘膜 DC 的分布 | 第40-42页 |
| 4 讨论 | 第42-47页 |
| 4.1 小鼠腹腔肥大细胞的分离 | 第42页 |
| 4.2 布鲁菌 S2 株和布鲁菌 S2WboA-/-株对 MC TLRs 的影响 | 第42-43页 |
| 4.3 抗 c-kit 抗体清除小鼠 MC | 第43-44页 |
| 4.4 血清中 TNF-α的含量 | 第44页 |
| 4.5 血清中 IFN-γ的含量 | 第44-45页 |
| 4.6 血清中 IL-4 的含量 | 第45页 |
| 4.7 肥大细胞的形态和数量变化 | 第45页 |
| 4.8 布鲁菌 S2 株与布鲁菌 S2WboA-/-株诱导小鼠阴道粘膜 DCs 的分布 | 第45-47页 |
| 5 结论 | 第47-48页 |
| 参考文献 | 第48-54页 |
| 在读期间发表的论文情况 | 第54-55页 |
| 作者简历 | 第55-56页 |
| 致谢 | 第56-57页 |