| 摘要 | 第7-9页 |
| Abstract | 第9-11页 |
| 第1章 综述 | 第12-37页 |
| 1.1 脑出血 | 第12-19页 |
| 1.1.1 大型脑出血 | 第12-14页 |
| 1.1.2 脑微出血 | 第14-15页 |
| 1.1.3 脑出血的动物模型 | 第15-17页 |
| 1.1.4 斑马鱼在脑血管疾病中的应用 | 第17-19页 |
| 1.2 血管完整性的保持 | 第19-23页 |
| 1.2.1 血管内皮细胞的连接 | 第19-21页 |
| 1.2.2 血管的损伤修复 | 第21-23页 |
| 1.3 巨噬细胞 | 第23-31页 |
| 1.3.1 巨噬细胞在脑出血中的作用 | 第23-24页 |
| 1.3.2 巨噬细胞与血管的相互作用 | 第24-29页 |
| 1.3.3 巨噬细胞在动脉粥样硬化中的作用 | 第29-31页 |
| 1.4 生物机械力的作用 | 第31-36页 |
| 1.4.1 生物机械力的重要性 | 第31-32页 |
| 1.4.2 机械力传递 | 第32-33页 |
| 1.4.3 巨噬细胞的机械力 | 第33-34页 |
| 1.4.4 血流对血管的生物学影响 | 第34-36页 |
| 1.5 研究目的 | 第36-37页 |
| 第2章 材料和方法 | 第37-65页 |
| 2.1 实验动物及饲养 | 第37-38页 |
| 2.2 耗材、试剂和仪器 | 第38页 |
| 2.3 培养基和主要试剂的配制 | 第38-41页 |
| 2.3.1 LB培养基的配制 | 第38-39页 |
| 2.3.2 缓冲溶液配制 | 第39-41页 |
| 2.4 质粒和菌株 | 第41页 |
| 2.5 试验方法 | 第41-65页 |
| 2.5.1 核酸提取 | 第41-43页 |
| 2.5.2 反转录制备cDNA | 第43-44页 |
| 2.5.3 PCR | 第44-46页 |
| 2.5.4 转化大肠杆菌 | 第46-48页 |
| 2.5.5 质粒的亚克隆 | 第48-50页 |
| 2.5.6 反义探针制备 | 第50-53页 |
| 2.5.7 显微注射 | 第53页 |
| 2.5.8 抗体显色 | 第53-54页 |
| 2.5.9 原位杂交 | 第54-56页 |
| 2.5.10荧光原位杂交 | 第56-57页 |
| 2.5.11 细胞流式筛选 | 第57-58页 |
| 2.5.12 药物处理 | 第58-60页 |
| 2.5.13 血管损伤方法 | 第60页 |
| 2.5.14 单细胞变色的方法 | 第60页 |
| 2.5.15 荧光能量共振转移（FRET）实验方法 | 第60-62页 |
| 2.5.16 转录组测序 | 第62-65页 |
| 第3章 实验结果 | 第65-95页 |
| 3.1 前言 | 第65-66页 |
| 3.2 实验结果 | 第66-95页 |
| 3.2.1 斑马鱼脑出血模型的构建 | 第66页 |
| 3.2.2 巨噬细胞在血管损伤后的响应 | 第66-70页 |
| 3.2.3 损伤血管通过ATP招募巨噬细胞响应损伤 | 第70-73页 |
| 3.2.4 巨噬细胞通过机械作用修复损伤 | 第73-79页 |
| 3.2.5 PI3K和Rac1在修复过程中起重要的作用 | 第79-86页 |
| 3.2.6 不依赖于巨噬细胞的修复模式 | 第86-92页 |
| 3.2.7 其他问题 | 第92-95页 |
| 第4章 总结和讨论 | 第95-99页 |
| 4.1 总结 | 第95页 |
| 4.2 讨论 | 第95-99页 |
| 4.2.1 巨噬细胞在血管修复中的主导作用 | 第95-96页 |
| 4.2.2 内皮细胞通过分泌ATP来招募巨噬细胞 | 第96页 |
| 4.2.3 内皮细胞自我延伸修复方式 | 第96-97页 |
| 4.2.4 研究的创新和生物学意义 | 第97-99页 |
| 参考文献 | 第99-131页 |
| 致谢 | 第131-133页 |
| 博士在读期间发表论文及科研工作 | 第133页 |
