| 摘要 | 第7-9页 |
| Abstract | 第9-11页 |
| 缩略词表 | 第12-13页 |
| 1 前言 | 第13-42页 |
| 1.1 根冠结构 | 第13-19页 |
| 1.1.1 闭合式RAM的根冠 | 第14-17页 |
| 1.1.2 开放式RAM的根冠 | 第17-18页 |
| 1.1.3 根尖RAM转变影响根冠的结构 | 第18-19页 |
| 1.2 胚胎及胚根根冠发育 | 第19-23页 |
| 1.2.1 胚胎及胚根根冠发育过程 | 第19-21页 |
| 1.2.2 影响胚胎发育的因素 | 第21-22页 |
| 1.2.3 参与胚胎发育的相关基因 | 第22-23页 |
| 1.3 根冠特异细胞的识别 | 第23页 |
| 1.4 根冠细胞分裂及根冠形态的维持 | 第23-26页 |
| 1.5 根冠再生相关研究 | 第26-27页 |
| 1.6 根冠的功能 | 第27-41页 |
| 1.6.1 根冠对根系形态的影响 | 第28页 |
| 1.6.2 根冠的形态与功能 | 第28-29页 |
| 1.6.3 根冠与穿透力 | 第29-31页 |
| 1.6.4 根冠与重力反应 | 第31-36页 |
| 1.6.5 根冠与亲水反应 | 第36-39页 |
| 1.6.6 根冠边缘细胞的功能 | 第39-41页 |
| 1.7 本研究的目的与意义 | 第41-42页 |
| 2 材料与方法 | 第42-48页 |
| 2.1 本研究所用实验材料 | 第42页 |
| 2.2 实验材料的种植及取样 | 第42-43页 |
| 2.2.1 胚胎根冠发育研究材料的种植及取样 | 第42页 |
| 2.2.2 水稻主根相关实验的材料种植及取样 | 第42-43页 |
| 2.3 树脂切片制样 | 第43页 |
| 2.4 根尖的去除试验 | 第43-44页 |
| 2.5 β-葡糖醛酸糖苷酶(β-glucuronidase,GUS)染色 | 第44页 |
| 2.6 5-乙炔基-2-脱氧尿苷(5-Ethynyl-2'-deoxyuridine,EdU)标记 | 第44-45页 |
| 2.7 根冠边缘细胞染色 | 第45页 |
| 2.8 根冠边缘细胞统计方法 | 第45页 |
| 2.9 各种化学物质处理 | 第45页 |
| 2.10 群体根尖角度性状及边缘细胞性状考察 | 第45-46页 |
| 2.11 转录组分析 | 第46页 |
| 2.12 实时定量PCR(qRT-PCR) | 第46-48页 |
| 3 结果与分析 | 第48-82页 |
| 3.1 胚胎根冠的发育过程 | 第48-52页 |
| 3.2 主根根冠的细胞命运和细胞谱系 | 第52-56页 |
| 3.3 生长素和QC调节根冠的再生 | 第56-60页 |
| 3.4 影响根冠再生的因素 | 第60-68页 |
| 3.5 水稻根冠特异表达的转录本相关基因 | 第68页 |
| 3.6 细胞分裂素和油菜素甾醇(BR)参与了根冠再生启动的调控 | 第68-71页 |
| 3.7 水稻根冠构型相关QTL的初步定位 | 第71-77页 |
| 3.7.1 亲本的确定 | 第71-72页 |
| 3.7.2 亲本表型分析 | 第72-73页 |
| 3.7.3 水稻根尖角度表型的QTL定位 | 第73-77页 |
| 3.8 根冠构型与边缘细胞的数量相关 | 第77-80页 |
| 3.9 Ag~+处理加速了根冠边缘细胞产生的原因 | 第80-82页 |
| 4 讨论 | 第82-86页 |
| 4.1 胚胎及胚后主根根冠发育分析 | 第82-83页 |
| 4.2 水稻根冠再生机制分析 | 第83-84页 |
| 4.3 水稻根冠特异表达基因的分析 | 第84页 |
| 4.4 QC细胞分裂可能参与了根冠再生的启动 | 第84页 |
| 4.5 根冠构型与其功能相关 | 第84-85页 |
| 4.6 根系相关QTL定位 | 第85-86页 |
| 参考文献 | 第86-100页 |
| 附录 | 第100-169页 |
| 致谢 | 第169页 |
