中文摘要 | 第6-8页 |
英文摘要 | 第8-10页 |
常用缩写词中英文对照表 | 第11-12页 |
前言 | 第12-14页 |
第一部分 BALB/c乳腺癌上皮细胞 4T1的基因修饰 | 第14-27页 |
1 材料与方法 | 第14-21页 |
1.1 实验材料 | 第14-15页 |
1.2 4T1细胞的培养及药杀实验 | 第15-17页 |
1.3 慢病毒包装 | 第17-18页 |
1.4 Fluc-4T1/HER2的稳定建系 | 第18-21页 |
2 结果 | 第21-23页 |
2.1 4T1细胞药物杀伤预实验结果 | 第21页 |
2.2 报告基因Fluc的检测结果 | 第21-22页 |
2.3 HER2基因的检测结果 | 第22-23页 |
3 讨论 | 第23-26页 |
3.1 细胞培养技术应注意的问题 | 第23页 |
3.2 HER2/4T1-Luc稳定建系的意义 | 第23-24页 |
3.3 细胞药杀预实验的意义 | 第24页 |
3.4 载体的耐药性 | 第24页 |
3.5 包装慢病毒应注意的问题 | 第24-26页 |
4 结论 | 第26-27页 |
第二部分 乳腺癌转移模型的建立 | 第27-38页 |
1 材料与方法 | 第27-31页 |
1.1 实验材料 | 第27-28页 |
1.2 三种建模途径的对比 | 第28-31页 |
2 结果 | 第31-35页 |
2.1 活体成像结果 | 第31-33页 |
2.2 HE染色结果 | 第33-34页 |
2.3 转移情况对比结果 | 第34-35页 |
3 讨论 | 第35-37页 |
3.1 建模细胞的状态 | 第35页 |
3.2 乳房垫原位注射建模时应注意的问题 | 第35页 |
3.3 尾静脉注射建模时应注意的问题 | 第35页 |
3.4 左心室注射建模时应注意的问题 | 第35-37页 |
4 结论 | 第37-38页 |
第三部分 e23sFv-TD-t Bid的功能学实验 | 第38-49页 |
1 材料与方法 | 第38-42页 |
1.1 实验材料 | 第38-39页 |
1.2 目标促凋亡分子e23sFv-TD-tBid对Fluc-4T1/HER2细胞的生长抑制实验 | 第39-40页 |
1.3 目标促凋亡分子e23sFv-TD-tBid的体内抗乳腺癌转移活性 | 第40-42页 |
2 结果 | 第42-47页 |
2.1 e23sFv-TD-tBid对Fluc-4T1/HER2细胞的生长抑制实验结果 | 第42-44页 |
2.2 免疫促凋亡分子e23sFv-TD-tBid的体内抗乳腺癌转移结果 | 第44-47页 |
3 讨论 | 第47-48页 |
3.1 体内体外实验结合的意义 | 第47页 |
3.2 给药剂量的设定 | 第47页 |
3.3 药物分子竞争结合的饱和性 | 第47-48页 |
4 结论 | 第48-49页 |
参考文献 | 第49-51页 |
综述 | 第51-64页 |
参考文献 | 第60-64页 |
致谢 | 第64-65页 |
在学期间承担/参与的科研课题与研究成果 | 第65-66页 |
个人简历 | 第66页 |