| 摘要 | 第7-10页 |
| ABSTRACT | 第10-13页 |
| 符号说明 | 第15-18页 |
| 文献综述 | 第18-73页 |
| 综述一 心肌β肾上腺素能受体研究进展 | 第18-33页 |
| 1. βAR的亚型 | 第18页 |
| 2. βAR信号转导通路 | 第18-19页 |
| 2.1 β_1-AR信号转导通路 | 第18-19页 |
| 2.2 β_2-AR信号转导通路 | 第19页 |
| 2.3 β_3-AR信号转导通路 | 第19页 |
| 3. βAR亚型间的相互作用 | 第19-20页 |
| 4. β-AR信号转导通路的调节机制 | 第20-21页 |
| 5. β-AR信号转导通路与心脏疾病 | 第21-23页 |
| 5.1 β-AR与心肌缺血性损伤 | 第21-23页 |
| 5.2 β-AR与心力衰竭 | 第23页 |
| 6. 小结 | 第23-25页 |
| 参考文献 | 第25-33页 |
| 综述二 毒蕈碱M_2受体研究进展 | 第33-54页 |
| 1. M_2AchR的分子结构 | 第33页 |
| 2. M_2AchR的分布 | 第33页 |
| 3. M_2AchR的生理功能 | 第33-35页 |
| 4. M_2AchR的信号转导通路 | 第35-41页 |
| 4.1 M_2AchR激活GIRK通道 | 第35-36页 |
| 4.2 M_2AchR抑制cAMP依赖性反应 | 第36页 |
| 4.3 NO和cGMP在抑制cAMP依赖性反应中的作用 | 第36-38页 |
| 4.4 毒蕈碱促进cAMP依赖性反应 | 第38-40页 |
| 4.5 NO和cGMP在促进cAMP依赖性反应中的作用 | 第40页 |
| 4.6 AC激活的直接调节作用 | 第40-41页 |
| 5. 总结 | 第41-42页 |
| 参考文献 | 第42-54页 |
| 综述三 针刺内关穴治疗心肌缺血的研究进展 | 第54-73页 |
| 1. 内关治疗冠心病的临床研究进展 | 第54-56页 |
| 2. 内关改善心肌缺血的机制研究进展 | 第56-63页 |
| 2.1 影响基因组表达 | 第56页 |
| 2.2 促进血管新生 | 第56-57页 |
| 2.3 调节血管张力 | 第57-58页 |
| 2.4 抑制炎症反应 | 第58页 |
| 2.5 抑制细胞凋亡 | 第58-60页 |
| 2.6 抑制氧化应激 | 第60-61页 |
| 2.7 抑制血小板聚集 | 第61-62页 |
| 2.8 对自主神经系统的调控 | 第62-63页 |
| 3. 小结与展望 | 第63-65页 |
| 参考文献 | 第65-73页 |
| 前言 | 第73-76页 |
| 实验研究 | 第76-117页 |
| 1. 实验材料 | 第76-81页 |
| 1.1 实验动物与分组 | 第76-77页 |
| 1.2 实验器材及仪器 | 第77-78页 |
| 1.3 实验试剂 | 第78-81页 |
| 1.3.1 酶联免疫吸附实验(ELISA) | 第78-79页 |
| 1.3.2 蛋白质印迹法(免疫印迹实验,Western Blot) | 第79-80页 |
| 1.3.3 心肌细胞钙瞬变检测 | 第80-81页 |
| 1.3.4 形态学检测 | 第81页 |
| 2. 实验方法 | 第81-93页 |
| 2.1 心肌缺血动物模型的建立 | 第81-82页 |
| 2.2 针刺方法 | 第82页 |
| 2.3 小鼠心脏和血清的取材 | 第82页 |
| 2.4 酶联免疫吸附试验(ELISA) | 第82-85页 |
| 2.4.1 心肌组织中cAMP和cGMP含量的测定 | 第82-84页 |
| 2.4.2 血清中cTnT含量的检测 | 第84-85页 |
| 2.5 蛋白质印迹法(Western Blot) | 第85-88页 |
| 2.5.1 蛋白提取 | 第85页 |
| 2.5.2 蛋白定量:采用BCA法进行蛋白定量 | 第85页 |
| 2.5.3 蛋白浓度调整及蛋白变性 | 第85页 |
| 2.5.4 配制分离胶和浓缩胶 | 第85-86页 |
| 2.5.5 电泳 | 第86页 |
| 2.5.6 转膜:采用湿转法 | 第86页 |
| 2.5.7 封闭 | 第86-87页 |
| 2.5.8 一抗孵育 | 第87页 |
| 2.5.9 二抗孵育 | 第87页 |
| 2.5.10 曝光显影 | 第87-88页 |
| 2.5.11 内参蛋白Western Blot实验 | 第88页 |
| 2.5.12 读取灰度值 | 第88页 |
| 2.6 心肌细胞钙瞬变检测 | 第88-91页 |
| 2.6.1 溶液配制 | 第88-90页 |
| 2.6.2 分离小鼠心肌细胞 | 第90页 |
| 2.6.3 复钙 | 第90-91页 |
| 2.6.4 小鼠心肌细胞负载Fura-2/AM荧光探针 | 第91页 |
| 2.6.5 单个心肌细胞内钙瞬变的检测 | 第91页 |
| 2.7 形态学检测 | 第91-92页 |
| 2.7.1 组织取材和样品制备 | 第91页 |
| 2.7.2 HE染色 | 第91-92页 |
| 2.7.3 HBFP染色 | 第92页 |
| 2.7.4 切片图像获取及处理 | 第92页 |
| 2.8 统计学方法 | 第92-93页 |
| 3. 实验结果 | 第93-110页 |
| 3.1 电针内关对心肌缺血的改善效应 | 第93-97页 |
| 3.1.1 各组C57BL6小鼠心电图的改变 | 第93-95页 |
| 3.1.2 各组C57BL6小鼠血清cTnT水平的变化 | 第95页 |
| 3.1.3 各组C57BL6小鼠心肌组织切片变化 | 第95-97页 |
| 3.2 电针内关穴对β_1AR和M_2AChR信号通路的影响 | 第97-110页 |
| 3.2.1 电针内关穴对β_1AR信号转导通路的影响 | 第97-104页 |
| 3.2.2 电针内关穴对M_2AChR信号转导通路的影响 | 第104-110页 |
| 4. 小结 | 第110-111页 |
| 5. 讨论 | 第111-117页 |
| 5.1 动物模型的选择 | 第111-112页 |
| 5.2 电针内关穴改善心肌缺血的效应 | 第112-113页 |
| 5.3 β_1-AR和M_2AchR信号通路介导的心肌缺血保护效应机制 | 第113-117页 |
| 结语 | 第117-118页 |
| 参考文献 | 第118-125页 |
| 致谢 | 第125-127页 |
| 在学期间主要研究成果 | 第127页 |
