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青藤碱对DC2.4成熟的影响及诱导成熟DC2.4凋亡的作用机制研究

中文摘要第5-9页
Abstract第9-12页
缩略语表第13-15页
第一章 BALB/c小鼠骨髓源原代DC与DC2.4的比较第15-31页
    1 前言第15-16页
    2 实验材料第16-19页
        2.1 实验动物与细胞株第16页
        2.2 实验仪器及材料第16-18页
        2.3 细胞培养所需试剂和配制方法第18-19页
    3 实验方法第19-21页
        3.1 DC2.4细胞培养与分组第19-20页
        3.2 骨髓来源DC原代细胞的培养第20-21页
        3.3 DC表面标志物检测第21页
        3.4 统计学分析第21页
    4 结果第21-27页
        4.1 细胞形态学分析第21-23页
        4.2 细胞表面标志物检测第23-27页
    5 小结第27-28页
    6 讨论第28-31页
第二章 青藤碱对DC2.4成熟的影响第31-64页
    1 前言第31页
    2 实验材料第31-36页
        2.1 实验动物与细胞株第31-32页
        2.2 实验药品与试剂第32-34页
        2.3 实验仪器及材料第34-35页
        2.4 主要溶液配制第35-36页
    3 实验方法第36-42页
        3.1 受试药给药浓度的设计第36-37页
        3.2 青藤碱对DC2.4成熟的影响第37-42页
        3.3 统计学分析第42页
    4 实验结果第42-56页
        4.1 受试药给药浓度的设计第42-43页
        4.2 青藤碱给药浓度对DC2.4的毒性作用第43页
        4.3 青藤碱对DC2.4分泌炎性因子的影响第43-51页
        4.4 青藤碱对DC2.4成熟相关表面标志物CD80,CD86表达的影响第51-54页
        4.5 青藤碱对DC2.4激活T淋巴细胞的影响第54-56页
    5 小结第56-58页
    6 讨论第58-64页
第三章 青藤碱对成熟DC2.4凋亡的研究第64-104页
    1 前言第64-65页
    2 实验材料第65-69页
        2.1 实验细胞第65页
        2.2 主要试剂第65-67页
        2.3 实验仪器及材料第67-69页
    3 实验方法第69-85页
        3.1 MTT检测青藤碱对成熟DC2.4增值的抑制第69页
        3.2 流式细胞仪检测青藤碱对成熟D02.4凋亡的影响第69-71页
        3.3 qPCR检测凋亡相关基因Bc l-2,Bax及Fas的表达第71-76页
        3.4 Western Blot检测青藤碱对成熟DC2.4 Caspase3,Caspase9及PARP表达的影响第76-85页
    4 实验结果第85-95页
        4.1 不同浓度的青藤碱对成熟DC2.4细胞增殖的影响第85-86页
        4.2 流式细胞仪检测青藤碱对成熟后D02.4凋亡的影响第86-88页
        4.3 PCR检测青藤碱对成熟DC2.4Bcl-2,Bax及Fas表达的影响第88-93页
        4.4 western检测青藤碱对成熟DC2.4 caspase3、cleaved caspase9及cleavedPARP表达的影响第93-95页
    5 小结第95-96页
        5.1 不同浓度的青藤碱对成熟DC2.4细胞增殖的影响第95-96页
        5.2 流式细胞仪检测青藤碱对成熟后DC2.4凋亡的影响第96页
        5.3. PCR检测青藤碱对成熟DC2.48cl-2,Bax及Fas表达的影响第96页
        5.4. western blot检测青藤碱对成熟DC2.4 caspase3、cleaved-caspase9及cleaved-PARP表达的影响第96页
    6 讨论第96-104页
结论第104-105页
参考文献第105-113页
本研究的创新性第113-114页
存在问题及展望第114-115页
致谢第115-116页
发表文章第116-117页
综述一 树突状细胞的分化成熟与JAK-STAT信号通路的研究进展第117-126页
    参考文献第121-126页
综述二 线粒体、细胞色素C与细胞调亡第126-142页
    参考文献第136-142页

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