中文摘要 | 第5-9页 |
Abstract | 第9-12页 |
缩略语表 | 第13-15页 |
第一章 BALB/c小鼠骨髓源原代DC与DC2.4的比较 | 第15-31页 |
1 前言 | 第15-16页 |
2 实验材料 | 第16-19页 |
2.1 实验动物与细胞株 | 第16页 |
2.2 实验仪器及材料 | 第16-18页 |
2.3 细胞培养所需试剂和配制方法 | 第18-19页 |
3 实验方法 | 第19-21页 |
3.1 DC2.4细胞培养与分组 | 第19-20页 |
3.2 骨髓来源DC原代细胞的培养 | 第20-21页 |
3.3 DC表面标志物检测 | 第21页 |
3.4 统计学分析 | 第21页 |
4 结果 | 第21-27页 |
4.1 细胞形态学分析 | 第21-23页 |
4.2 细胞表面标志物检测 | 第23-27页 |
5 小结 | 第27-28页 |
6 讨论 | 第28-31页 |
第二章 青藤碱对DC2.4成熟的影响 | 第31-64页 |
1 前言 | 第31页 |
2 实验材料 | 第31-36页 |
2.1 实验动物与细胞株 | 第31-32页 |
2.2 实验药品与试剂 | 第32-34页 |
2.3 实验仪器及材料 | 第34-35页 |
2.4 主要溶液配制 | 第35-36页 |
3 实验方法 | 第36-42页 |
3.1 受试药给药浓度的设计 | 第36-37页 |
3.2 青藤碱对DC2.4成熟的影响 | 第37-42页 |
3.3 统计学分析 | 第42页 |
4 实验结果 | 第42-56页 |
4.1 受试药给药浓度的设计 | 第42-43页 |
4.2 青藤碱给药浓度对DC2.4的毒性作用 | 第43页 |
4.3 青藤碱对DC2.4分泌炎性因子的影响 | 第43-51页 |
4.4 青藤碱对DC2.4成熟相关表面标志物CD80,CD86表达的影响 | 第51-54页 |
4.5 青藤碱对DC2.4激活T淋巴细胞的影响 | 第54-56页 |
5 小结 | 第56-58页 |
6 讨论 | 第58-64页 |
第三章 青藤碱对成熟DC2.4凋亡的研究 | 第64-104页 |
1 前言 | 第64-65页 |
2 实验材料 | 第65-69页 |
2.1 实验细胞 | 第65页 |
2.2 主要试剂 | 第65-67页 |
2.3 实验仪器及材料 | 第67-69页 |
3 实验方法 | 第69-85页 |
3.1 MTT检测青藤碱对成熟DC2.4增值的抑制 | 第69页 |
3.2 流式细胞仪检测青藤碱对成熟D02.4凋亡的影响 | 第69-71页 |
3.3 qPCR检测凋亡相关基因Bc l-2,Bax及Fas的表达 | 第71-76页 |
3.4 Western Blot检测青藤碱对成熟DC2.4 Caspase3,Caspase9及PARP表达的影响 | 第76-85页 |
4 实验结果 | 第85-95页 |
4.1 不同浓度的青藤碱对成熟DC2.4细胞增殖的影响 | 第85-86页 |
4.2 流式细胞仪检测青藤碱对成熟后D02.4凋亡的影响 | 第86-88页 |
4.3 PCR检测青藤碱对成熟DC2.4Bcl-2,Bax及Fas表达的影响 | 第88-93页 |
4.4 western检测青藤碱对成熟DC2.4 caspase3、cleaved caspase9及cleavedPARP表达的影响 | 第93-95页 |
5 小结 | 第95-96页 |
5.1 不同浓度的青藤碱对成熟DC2.4细胞增殖的影响 | 第95-96页 |
5.2 流式细胞仪检测青藤碱对成熟后DC2.4凋亡的影响 | 第96页 |
5.3. PCR检测青藤碱对成熟DC2.48cl-2,Bax及Fas表达的影响 | 第96页 |
5.4. western blot检测青藤碱对成熟DC2.4 caspase3、cleaved-caspase9及cleaved-PARP表达的影响 | 第96页 |
6 讨论 | 第96-104页 |
结论 | 第104-105页 |
参考文献 | 第105-113页 |
本研究的创新性 | 第113-114页 |
存在问题及展望 | 第114-115页 |
致谢 | 第115-116页 |
发表文章 | 第116-117页 |
综述一 树突状细胞的分化成熟与JAK-STAT信号通路的研究进展 | 第117-126页 |
参考文献 | 第121-126页 |
综述二 线粒体、细胞色素C与细胞调亡 | 第126-142页 |
参考文献 | 第136-142页 |