中文摘要 | 第9-11页 |
ABSTRACT | 第11-13页 |
第一章 文献综述 | 第14-19页 |
1.1 引言 | 第14页 |
1.2 蒽醌衍生物及其抗癌活性 | 第14-15页 |
1.2.1 植物中提取的天然蒽醌化合物 | 第14页 |
1.2.2 半合成的蒽醌衍生物 | 第14-15页 |
1.2.3 合成的蒽醌衍生物 | 第15页 |
1.3 ROS-JNK信号通路简介 | 第15-17页 |
1.3.1 ROS-JNK信号通路与凋亡 | 第15-16页 |
1.3.2 ROS-JNK信号通路与自噬 | 第16页 |
1.3.3 凋亡与自噬的相互作用 | 第16-17页 |
1.4 本论文研究的目的与意义 | 第17-19页 |
第二章 C2、C3与DNA和BSA相互作用的研究 | 第19-29页 |
2.1 引言 | 第19页 |
2.2 实验材料、试剂与仪器 | 第19-20页 |
2.2.1 实验材料及主要试剂 | 第19-20页 |
2.2.2 实验仪器 | 第20页 |
2.4 实验方法 | 第20-22页 |
2.4.1 C2、C3与BSA的相互作用研究 | 第20-21页 |
2.4.2 C2、C3与DNA的相互作用研究 | 第21-22页 |
2.5 结果与讨论 | 第22-29页 |
2.5.1 C2、C3与BSA的相互作用 | 第22-24页 |
2.5.2 C2、C3与DNA的相互作用 | 第24-29页 |
第三章 C2和C3诱导HCT116细胞死亡 | 第29-42页 |
3.1 引言 | 第29页 |
3.2 实验材料与仪器 | 第29-30页 |
3.2.1 材料及主要试剂 | 第29-30页 |
3.2.2 主要实验设备与仪器 | 第30页 |
3.3 实验方法 | 第30-33页 |
3.3.1 细胞培养 | 第30-31页 |
3.3.2 MTT检测 | 第31页 |
3.3.3 HCT116细胞形态学观察 | 第31页 |
3.3.4 DAPI染色法检测细胞核变化 | 第31-32页 |
3.3.5 细胞周期的检测 | 第32页 |
3.3.6 细胞凋亡检测 | 第32页 |
3.3.7 Monodansylcadaverine (MDC)染色检测自噬 | 第32页 |
3.3.8 GFP-LC3定位验证自噬 | 第32-33页 |
3.3.9 Western blot检测蛋白表达量 | 第33页 |
3.3.10 统计学分析 | 第33页 |
3.4 结果与分析 | 第33-41页 |
3.4.1 MTT检测 | 第33-34页 |
3.4.2 C2、C3对HCT116细胞形态的影响 | 第34-35页 |
3.4.3 C2或C3对HCT116细胞凋亡的影响 | 第35-36页 |
3.4.4 C2或C3对HCT116细胞周期的影响 | 第36-37页 |
3.4.5 C2或C3诱导HCT116细胞自噬的检测 | 第37-39页 |
3.4.6 C3对HCT116细胞凋亡蛋白表达量的影响 | 第39页 |
3.4.7 C3对HCT116细胞自噬蛋白表达量的影响 | 第39-41页 |
3.5 小结 | 第41-42页 |
第四章 C3通过ROS-JNK信号通路诱导HCT116细胞死亡 | 第42-51页 |
4.1 引言 | 第42页 |
4.2 实验材料与仪器 | 第42-43页 |
4.2.1 材料及主要试剂 | 第42页 |
4.2.2 主要实验设备与仪器 | 第42-43页 |
4.3 实验方法 | 第43-44页 |
4.3.1 细胞培养 | 第43页 |
4.3.2 MTT检测 | 第43页 |
4.3.3 C3处理细胞后ROS水平检测 | 第43页 |
4.3.4 siRNA干扰 | 第43页 |
4.3.5 Western blot检测蛋白表达量 | 第43-44页 |
4.3.6 细胞总RNA提取及qRT-PCR | 第44页 |
4.3.7 统计学分析 | 第44页 |
4.4 结果与分析 | 第44-49页 |
4.4.1 C3诱导的ROS的升高激活JNK | 第44-45页 |
4.4.2 C3处理HCT116后BCL家族蛋白表达量的变化 | 第45-47页 |
4.4.3 JNK活化是caspase激活以及Beclin1和LC3-Ⅱ上调所必须 | 第47-49页 |
4.5 小结 | 第49-51页 |
总结与展望 | 第51-53页 |
参考文献 | 第53-61页 |
攻读学位期间取得的研究成果 | 第61-62页 |
致谢 | 第62-63页 |
个人简介及联系方式 | 第63-65页 |