| 摘要 | 第1-9页 |
| Abstract | 第9-12页 |
| 缩略语表 | 第12-13页 |
| 1 前言 | 第13-21页 |
| ·衣原体 | 第13-14页 |
| ·Toll样受体家族 | 第14-17页 |
| ·Toll样受体家族种类与分布 | 第14-15页 |
| ·Toll样受体功能 | 第15-16页 |
| ·TLR4的功能 | 第16-17页 |
| ·T细胞的分类 | 第17-20页 |
| ·调节性T细胞的功能 | 第17-18页 |
| ·Th17细胞的功能 | 第18-20页 |
| ·研究目的与意义 | 第20-21页 |
| 2 材料与方法 | 第21-35页 |
| ·材料 | 第21-24页 |
| ·实验动物与菌株 | 第21页 |
| ·主要试剂和仪器 | 第21-23页 |
| ·溶液配制 | 第23-24页 |
| ·ELISA相关溶液 | 第23-24页 |
| ·衣原体培养及感染相关溶液 | 第24页 |
| ·实验方法 | 第24-35页 |
| ·Chlamydia Muridarum培养、纯化及滴度测定 | 第24-27页 |
| ·Chlamydia Muridarum培养 | 第24-25页 |
| ·Chlamydia Muridarum收集 | 第25页 |
| ·复方泛影葡胺密度梯度离心法纯化Chlamydia Muridarum | 第25-26页 |
| ·Chlamydia Muridarum EB滴度的测定(免疫荧光法定量) | 第26-27页 |
| ·沙眼衣原体小鼠感染模型的建立和检测指标 | 第27-35页 |
| ·小鼠沙眼衣原体肺炎模型的建立 | 第27页 |
| ·肺组织中IFU的检测 | 第27-28页 |
| ·TRIzol法提取肺组织RNA | 第28-29页 |
| ·逆转录总RNA为cDNA | 第29-30页 |
| ·Real-time quantitative PCR | 第30页 |
| ·肺组织中MPO的检测 | 第30页 |
| ·脾细胞和纵膈淋巴结细胞的分离 | 第30-31页 |
| ·流式细胞术检测CD4+CD25+FoxP3+Treg细胞的表达 | 第31-32页 |
| ·流式细胞术检测IL-17+T细胞的表达 | 第32页 |
| ·流式细胞术检测肺泡灌洗液中中性粒细胞的表达 | 第32-33页 |
| ·流式细胞术检测IFN-γ+T细胞的表达 | 第33页 |
| ·ELISA检测肺组织匀浆上清液中IL-6、IL-17和IL-4、IL-5、IFN-γ浓度 | 第33-34页 |
| ·肺组织病理学染色 | 第34页 |
| ·统计学方法 | 第34-35页 |
| 3 结果与分析 | 第35-47页 |
| ·C3H/HeN,C3H/HeJ小鼠巨噬细胞刺激实验 | 第35页 |
| ·C3H/HeN,C3H/HeJ小鼠感染衣原体后的体重变化 | 第35-36页 |
| ·C3H/HeN,C3H/HeJ小鼠感染衣原体后的存活率变化 | 第36-37页 |
| ·C3H/HeN,C3H/HeJ小鼠感染后衣原体载量的差异 | 第37-38页 |
| ·C3H/HeN,C3H/HeJ小鼠衣原体感染后的免疫病理损伤 | 第38-39页 |
| ·C3H/HeN,C3H/HeJ小鼠感染衣原体肺组织中MPO的水平 | 第39-40页 |
| ·C3H/HeN, C3H/HeJ小鼠感染衣原体肺泡灌洗液中粒细胞差异 | 第40-41页 |
| ·C3H/HeN,C3H/HeJ小鼠感染衣原体后Treg动态变化 | 第41-42页 |
| ·C3H/HeN,C3H/HeJ小鼠感染衣原体后Th-1免疫反应 | 第42-43页 |
| ·C3H/HeN,C3H/HeJ小鼠感染衣原体后Th-2免疫反应 | 第43-44页 |
| ·C3H/HeN,C3H/HeJ小鼠感染衣原体后IL-17/Th17反应 | 第44-45页 |
| ·C3H/HeN,C3H/HeJ小鼠感染衣原体Th17相关趋化因子表达 | 第45-47页 |
| 4 讨论 | 第47-51页 |
| 参考文献 | 第51-57页 |
| 致谢 | 第57-58页 |
| 附录 | 第58页 |
