| 主要缩略词中英文对照表 | 第1-7页 |
| 中文摘要 | 第7-9页 |
| 英文摘要 | 第9-12页 |
| 前言 | 第12-18页 |
| 第一部分 树突状细胞在两种肝癌细胞培养上清中的表型和功能变化 | 第18-37页 |
| 1 实验材料 | 第18-22页 |
| ·实验取材 | 第18页 |
| ·主要试剂 | 第18页 |
| ·主要溶液 | 第18-21页 |
| ·主要仪器及耗材 | 第21-22页 |
| 2 实验方法 | 第22-26页 |
| ·条件培养基的制备 | 第22页 |
| ·脐血来源树突状细胞(CBDC)的体外诱导培养 | 第22页 |
| ·实验分组 | 第22页 |
| ·细胞形态学鉴定 | 第22-23页 |
| ·FCM检测DC特异性表面分子表达 | 第23页 |
| ·MTT检测单向同种异体混合淋巴细胞反应 | 第23-24页 |
| ·ELISA检测MLR上清中IFN-γ的分泌水平 | 第24-25页 |
| ·ELISA检测DC培养上清液中IL-12的分泌水平 | 第25页 |
| ·统计方法 | 第25-26页 |
| 3.结果与分析 | 第26-33页 |
| ·DC培养形态学的观察 | 第26页 |
| ·DC特异性表面分子检测 | 第26-27页 |
| ·各组单向同种异体混合淋巴细胞反应水平检测 | 第27-29页 |
| ·不同诱导体系培养DC上清液IL-12水平测定 | 第29-31页 |
| ·各组MLR上清液中IFN-γ分泌量的测定 | 第31-33页 |
| 4.讨论 | 第33-36页 |
| 5.结论 | 第36-37页 |
| 第二部分 羧甲基茯苓多糖对在两种肝癌细胞上清液中培养DC的成熟及免疫功能影响 | 第37-56页 |
| 1.实验材料 | 第37-39页 |
| ·细胞取材及药物来源 | 第37页 |
| ·主要试剂 | 第37页 |
| ·主要溶液 | 第37-38页 |
| ·主要仪器及耗材 | 第38-39页 |
| 2.实验方法 | 第39-43页 |
| ·不同诱导体系的制备和药物的配制 | 第39页 |
| ·脐血来源树突状细胞(CBDC)的体外诱导培养 | 第39页 |
| ·实验分组 | 第39-40页 |
| ·MTT检测各组单向同种异体混合淋巴细胞反应 | 第40页 |
| ·FCM检测DC特异性表面分子表达 | 第40页 |
| ·ELISA检测MLR上清中IFN-γ的分泌水平 | 第40页 |
| ·ELISA检测不同诱导体系培养的DC上清液中IL-12分泌水平 | 第40-41页 |
| ·ELISA检测DC中NF-κB的活性 | 第41-43页 |
| ·统计方法 | 第43页 |
| 3.结果与分析 | 第43-52页 |
| ·DC特异性表面分子的检测 | 第43-45页 |
| ·各组单向同种异体混合淋巴细胞反应水平检测 | 第45-48页 |
| ·不同诱导体系培养的DC上清液IL-12水平测定 | 第48-49页 |
| ·各组MLR上清液中IFN-γ分泌量的测定 | 第49-51页 |
| ·NF-κB活性的定量检测 | 第51-52页 |
| 4.讨论 | 第52-54页 |
| 5.结论 | 第54-55页 |
| 6.补充说明 | 第55-56页 |
| 相关参考文献 | 第56-62页 |
| 附录一 附图 | 第62-69页 |
| 附录二 在校期间发表论文及参研课题情况 | 第69-70页 |
| 致谢 | 第70页 |
