第一章 前言 | 第1-35页 |
第一节 硒蛋白 | 第9-19页 |
1. 硒 | 第9-10页 |
2. 硒蛋白 | 第10-14页 |
·谷胱苷肽过氧化物酶 | 第11-12页 |
·脱碘酶 | 第12-13页 |
·硫氧还蛋白还原酶 | 第13-14页 |
·甲酸脱氢酶 | 第14页 |
·甘氨酸还原酶 | 第14页 |
3 硒及硒蛋白的生物学作用 | 第14-16页 |
·硒与自由基 | 第14-15页 |
·缺硒性地方病与硒蛋白 | 第15-16页 |
参考文献 | 第16-19页 |
第二节 硒代半胱氨酸的生物合成 | 第19-26页 |
1. 硒蛋白的生物合成 | 第19-21页 |
2. 原核生物的硒代半胱氨酸插入元件 | 第21-22页 |
3. 硒蛋白的原核表达 | 第22-23页 |
参考文献 | 第23-26页 |
第三节 β–半乳糖苷酶 | 第26-31页 |
1. 研究概况 | 第26页 |
2. β–半乳糖苷酶性质 | 第26-28页 |
·结构特性 | 第26-27页 |
·来源 | 第27页 |
·生化特性 | 第27-28页 |
3. β–半乳糖苷酶在基因学中的应用 | 第28-30页 |
·在构建表达载体中的应用 | 第28页 |
·作为报告基因的应用 | 第28-30页 |
参考文献 | 第30-31页 |
第四节 本文的立论基础 | 第31-35页 |
参考文献 | 第32-35页 |
第二章 selA,selB 和selC 基因表达载体的构建 | 第35-52页 |
1. 实验材料 | 第35-36页 |
·主要试剂 | 第35页 |
·质粒和菌株 | 第35-36页 |
·主要仪器 | 第36页 |
·培养基和主要溶液的配制 | 第36页 |
2. 实验方法 | 第36-45页 |
·质粒的提取 | 第36页 |
·DNA片段的酶切与连接 | 第36-38页 |
·大肠杆菌感受态细胞的制备 | 第38-39页 |
·连接产物的转化 | 第39页 |
·阳性克隆的筛选及其鉴定 | 第39页 |
·重组质粒及其菌种的保存 | 第39页 |
·selA 基因的获得及其表达载体的构建 | 第39-41页 |
·selB 基因的获得及其表达载体的构建 | 第41-42页 |
·selAB 基因的获得及其表达载体的构建 | 第42-44页 |
·selB 不同结构域基因的获得及其表达载体的构建 | 第44页 |
·selC 基因的获得及其表达载体pEXT-selC 的构建 | 第44-45页 |
·连接产物的鉴定 | 第45页 |
3. 结果分析 | 第45-51页 |
·pBAD-SelA 载体的构建 | 第45-47页 |
·pBAD-SelB 载体的构建 | 第47页 |
·pBAD-SelAB 载体的构建 | 第47-48页 |
·pBAD-SelAB(SD)载体的构建 | 第48-49页 |
·pEXT-SelC 载体的构建 | 第49页 |
·pBAD-Se1813 载体的构建 | 第49-50页 |
·pBAD-Se1844 载体的构建 | 第50-51页 |
4. 讨论 | 第51-52页 |
第三章 selA,selB 和selC 基因在 Eschericoli coli 中的表达及它们对 Sec 插入效率的影响 | 第52-71页 |
1. 实验材料 | 第53-54页 |
·主要试剂 | 第53页 |
·质粒和菌株 | 第53页 |
·主要仪器 | 第53-54页 |
·培养基和主要溶液的配制 | 第54页 |
2. 实验方法 | 第54-56页 |
·质粒的转化 | 第54页 |
·培养基中是否添加无机硒对硒代半胱氨酸通读效率的影响 | 第54页 |
·selA 基因的诱导表达 | 第54-55页 |
·selB 基因的诱导表达 | 第55页 |
·selA,selB 和selC 基因的共表达对Sec 插入效率的影响 | 第55页 |
·β-半乳糖苷酶活力的检测 | 第55-56页 |
3. 结果分析 | 第56-68页 |
·selA 基因的诱导表达 | 第56-57页 |
·selB 基因的诱导表达 | 第57页 |
·selA 和selB 基因的共表达 | 第57-58页 |
·selB 基因不同结构域的诱导表达 | 第58-59页 |
·低浓度诱导时selAs,elB 与selC 基因的共表达对Sec 插入效率的影响 | 第59-64页 |
·不同阿拉伯糖浓度诱导对Sec 插入效率的影响 | 第64-66页 |
·探寻最佳的Sec 插入效率条件 | 第66-68页 |
4. 讨论 | 第68-69页 |
参考文献 | 第69-71页 |
中文摘要 | 第71-73页 |
英文摘要 | 第73-76页 |
致谢 | 第76页 |